大鼠可视尾静脉注射仪是用于大鼠尾注射的一款仪器,以往给大鼠注射都是靠盲打,靠经验,对科研新手来说极其困难,有了大鼠尾静脉注射仪,可以大大提高注射效率,该仪器可以显示出尾部血管位置,看可到针头注射动作,这样可以大大提高注射效率。大鼠可视尾静脉注射仪装有自动压尾装置,实验人员一个人既可操作。
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血管显影:光源穿透表皮后,静脉因血红蛋白吸收特定波长光而显影为深色。
自动压尾:机械压杆(压力≤300g)固定尾部并阻断血流,使血管充盈度提升40%。
辅助定位:部分设备支持数字移动平台调节进针位置,适配不同体型动物。
标准化操作训练方法
1. 仪器调试与预检
光源校准:开启LED黄光,调节光强至血管清晰可见(环境需避强光)。
压尾测试:检查压杆灵敏度(压力≤300g),确保尾部固定无位移。
放大镜/摄像头校准:调整焦距使针头刺入动作可视。
2. 动物准备与血管定位
固定动物:使用快装鼠筒(适配体重:小鼠17-40g,大鼠170-300g),前堵头需避开气管压迫。
血管扩张:用45℃温水浸泡尾部1-2分钟或酒精棉球擦拭,促进静脉充盈。
定位进针点:选择尾部下1/3处(距尾尖3-4mm),通过透射光观察侧静脉走向。
3. 注射技巧训练
进针角度:针头与血管呈15-30°角,斜面朝上平行进针。
成功判断:见回血后推进0.5-1cm,轻摆针头观察血管是否同步摆动。
推注控制:流速≤0.2ml/秒,高浓度药液需分段缓注。
4. 模拟训练与考核
亚甲蓝示踪训练:新操作员需完成50例模拟注射,考核达标后方可活体操作。
双人协作:主操作者控制针头,助手固定尾部(力度≤300g)。
注意事项
风险控制:药液外渗时立即停针,改注生理盐水稀释;误入动脉需反向冲洗。
动物福利:单血管24小时内禁重复穿刺,长期实验需监测尾部纤维化。
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