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脊髓是中枢神经系统的重要组成部分,承担着神经信号传导和神经调节等关键功能。在脊髓损伤、神经退行性疾病(如多发性硬化症等)中,脊髓内的细胞结构和功能会发生显著变化。然而,由于脊髓的特殊生理位置和复杂的组织结构,对其进行活体状态下的研究面临诸多挑战,传统的研究方法(如组织切片等)难以捕捉到脊髓内细胞的动态变化过程。随着光学成像技术的不断进步,如双光子荧光成像(TPEF)、受激拉曼散射成像(SRS)等技术的出现为在体观察生物组织内部结构和细胞动态提供了可能。同时,基因编辑技术的发展使得可以通过构建转基因动物,对特定细胞类型进行荧光标记,进一步推动了活体成像研究的发展。但如何将这些技术有效应用于脊髓研究以解决上述提到的问题,仍需要不断探索和优化实验方法。
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Fig1光学透明化的椎间窗对小鼠脊髓进行活体成像
采用Thy1-YFP-H×CX3CR1GFP/+双转基因小鼠,Thy1-YFP-H使有髓轴突特异性表达黄色荧光蛋白(YFP),CX3CR1GFP/+让小胶质细胞特异性表达绿色荧光蛋白(GFP),实现两类细胞在活体脊髓中双色可视化,为观察二者互作提供基础。
光学透明椎间窗口(Optically cleared IWLF)制备:
术前准备
麻醉小鼠,剃除手术区域(T11-T13椎骨对应背部)毛发,用碘伏消毒皮肤,建立无菌操作环境。该步骤保障手术区域清洁,避免感染干扰后续成像及细胞状态。
椎骨暴露与固定
在T11-T13椎骨上方做小切口,逐层分离暴露椎骨;移除椎骨表面及两侧肌肉、肌腱,用定制稳定台的夹持杆固定椎骨,维持脊髓成像区域稳定。
关键:保留黄韧带(LF)完整,它是维持脊髓局部微环境、避免手术引发免疫激活(如小胶质细胞异常形态改变)的核心结构。
脊髓窗口构建
轻柔清理T12-T13椎间隙内残留肌肉/肌腱,暴露被黄韧带覆盖的脊髓;手术全程避免触碰脊髓及窗口表面,防止物理损伤。向脊髓与盖玻片(置于夹持杆)的0.5-1mm间隙注入碘克沙醇,利用其光学透明特性消除组织散射,为双光子/受激拉曼成像提供清晰光路。
成像辅助(如需观察微血管)
成像前,经小鼠眶后静脉注射50μl德克萨斯红葡聚糖(70kDa,1mg/100μl生理盐水)使微血管被荧光标记,拓展成像观察维度。
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活体成像操作
设备与模式
采用双光子荧光(TPEF)+受激拉曼散射(SRS)成像系统:TPEF用于捕捉YFP(轴突)、GFP(小胶质细胞)荧光信号;SRS利用髓鞘拉曼峰(2863.5cm⁻¹)精准定位朗飞氏结(NR),交叉验证成像区域。
优势:多模态成像结合,既看细胞动态(TPEF)又精准锚定结构(SRS),解决生理互作研究需精准定位轴突功能区的难题。
动态成像采集
按时间序列(0-3分钟等间隔)采集荧光图像,记录小胶质细胞突起(初级/次级)与轴突(含NR)的接触、脱离过程,获取细胞互作动态数据。
操作要点:保持成像参数稳定(激光功率、扫描速度等),减少人为误差;设置合理时间间隔(如分钟级),平衡“捕捉动态”与“避免光损伤”。
数据量化分析:
接触模式分类
人工/半自动标注图像中“小胶质细胞-轴突接触事件”,区分间歇性接触(小胶质细胞突起短暂附着后脱离)与持续性接触(接触持续数分钟至数小时)。
统计不同接触模式占比,关联小胶质细胞结构(次级突起主导间歇性接触,初级突起/胞体参与持续性接触),解析结构-功能关联。
时间动态量化
以“单个朗飞氏结(NR)”为单位,绘制时间轴(横轴,分钟)×接触状态(纵轴,有/无接触)的矩阵图,统计有接触的NR占比随时间变化曲线。
术后与重复成像(可选流程)
单次成像后处理:
移除碘克沙醇,用生理盐水冲洗;涂抹液态Kwik-Sil固化保护窗口,缝合皮肤并涂聚维酮碘预防感染;小鼠置于加热垫复苏,单独饲养。
重复成像操作:
再次成像时,剪开皮肤、移除固化Kwik-Sil;剥离椎骨新生组织,确保夹持稳定;清理肉芽组织、重新暴露黄韧带,重复光学透明-成像流程,实现长期活体追踪。
总结
创新点:在“保留黄韧带、避免免疫激活”的前提下,实现脊髓内小胶质细胞-轴突(朗飞氏结)动态互作的活体可视化,解决传统方法(如固定组织切片)无法捕捉生理状态下细胞实时行为的痛点。 应用场景:为研究“神经-胶质互作的生理机制、损伤后响应模式”提供关键技术,后续可拓展至脊髓损伤、神经退行性疾病模型,解析小胶质细胞的保护/损伤作用机制。
注意事项:
在构建光学透明椎间窗口或其他暴露脊髓的操作中,容易对脊髓组织造成物理损伤,如穿刺、挤压等,进而影响脊髓的正常功能和成像结果。此外,去除椎骨周围肌肉和肌腱等组织时,若操作不当可能破坏脊髓的血供,导致局部缺血缺氧,影响细胞活性;
窗口稳定性维持:
为了实现长期、多次的活体成像,需要确保窗口的稳定性。但在实验过程中,窗口材料(如盖玻片等)可能会发生移位、污染,影响成像质量;而且窗口与脊髓组织之间的光学介质(如碘克沙醇)若流失或变质,也会降低光学透明度,干扰成像效果。
文献引用
Wu, W., He, Y., Chen, Y. et al. In vivo imaging in mouse spinal cord reveals that microglia prevent degeneration of injured axons. Nat Commun 15, 8837 (2024). https://doi.org/10.1038/s41467-024-53218-0
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