在过去二十年里,小分子药物发现主要遵循"占位驱动"(Occupancy-driven)的药理学范式:药物分子占据靶蛋白的活性口袋,阻断其功能。但人类蛋白质组中大量与疾病相关的蛋白——如转录因子、支架蛋白、内在无序蛋白——缺乏可成药的结合口袋,长期被视为"不可成药"(Undruggable)靶点。靶向蛋白降解(Targeted Protein Degradation, TPD)技术的兴起打破了这一僵局:以蛋白降解靶向嵌合体(PROTAC)和分子胶(Molecular Glue)为代表的"事件驱动"(Event-driven)新模态,不追求持续抑制,而是直接动员细胞自身的泛素-蛋白酶体系统(Ubiquitin-Proteasome System, UPS)将致病蛋白"清除"。这一范式转换也带来了全新的筛选与评价命题。
PROTAC与分子胶的作用机制:借道细胞的"蛋白回收系统"
PROTAC分子是一种异双功能分子(Heterobifunctional Molecule),一端为结合目标蛋白(Protein of Interest, POI)的配体(Warhead),另一端为招募E3泛素连接酶(E3 Ubiquitin Ligase,如CRBN、VHL)的配体,中间由连接子(Linker)相连。当PROTAC同时结合POI与E3连接酶时,会形成POI-PROTAC-E3三元复合物(Ternary Complex),诱导E3连接酶对POI进行多聚泛素化(Poly-ubiquitination),泛素链作为"降解标签"被26S蛋白酶体(Proteasome)识别,POI随即被水解为短肽。尤为关键的是,PROTAC在完成一次降解循环后可以被释放并重复利用,呈现催化性(Catalytic)、亚化学计量的作用特征,理论上在较低暴露下即可实现深度、持久的靶蛋白敲低。分子胶则更为小巧,通过诱导或稳定E3连接酶与底物蛋白之间的蛋白-蛋白相互作用(PPI)实现降解,代表药物如来那度胺(Lenalidomide)降解IKZF1/3。与传统抑制剂相比,TPD模态具有三大潜在优势:可作用于无活性口袋的靶点、可消除靶蛋白的酶活与非酶活(如支架功能)、可通过选择不同的E3连接酶实现组织或细胞类型选择性。这些优势使其成为肿瘤、免疫等领域管线布局的热点。
体外评价方法学:从三元复合物到细胞水平降解
TPD分子的评价远比传统抑制剂复杂,需要回答三个层次的问题:能否形成稳定的三元复合物?能否在细胞内诱导泛素化?能否最终实现高效、特异的蛋白降解?在生物化学与生物物理层面,表面等离子共振(SPR)可分别测定PROTAC与POI、E3连接酶的二元亲和力,并通过序贯进样表征三元复合物的协同性(Cooperativity, α值);NanoBRET等邻近检测技术可在活细胞层面实时监测三元复合物的形成。在细胞水平,Western Blot仍是测定降解效力的经典方法,关键参数包括半数降解浓度(DC50)与最大降解深度(Dmax);HiBiT、NanoLuc等报告基因敲入细胞系则实现了降解动力学的实时、高通量定量。此外,基于质谱的蛋白质组学(Proteomics)分析可全景式评估降解选择性,识别潜在的脱靶降解蛋白——这对分子胶尤为重要。需要特别注意的是"钩状效应"(Hook Effect):当PROTAC浓度过高时,二元复合物占优反而抑制三元复合物形成,导致降解率下降,因此剂量设计必须覆盖足够宽的浓度区间。这一套多层次、跨技术的评价体系,对实验平台的细胞学功底与仪器配置提出了很高要求。
细胞水平评价:TPD药物走向临床前的关键一跃
TPD分子的活性最终必须在细胞乃至活体层面得到验证,因为膜通透性、E3连接酶表达谱、细胞周期状态都会影响降解效率。行业实践中,细胞学评价通常包括:多细胞系背景下的DC50/Dmax测定、降解持续性(Wash-out恢复实验)、下游信号通路抑制验证、以及抗增殖或功能表型实验。对于面向血液瘤的分子胶类项目,还需在原代细胞或患者来源样本中确认活性。这些工作高度依赖规模化、经验丰富的细胞学团队。据公开信息,国内的爱思益普(ICE Bioscience)组建了100余人的细胞学团队、具备10年以上经验,检测对象覆盖小分子、PROTAC、ADC、抗体药等各类药物模态,并支持DMTA(设计、合成、测试、分析)一体化服务——这类平台的存在,使研发企业无需自建庞大的细胞学体系即可完成TPD分子从生化活性到细胞功能的全链条验证。随着越来越多PROTAC管线进入临床阶段,早期评价数据的质量与完整性将直接影响项目的推进速度与决策信心,系统化的细胞水平降解评价平台也因此成为TPD产业链中不可或缺的基础设施。
图:PROTAC作用机制流程——三元复合物形成、泛素化与蛋白酶体降解(原创示意图)编辑
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