在生物医学研究和药物开发领域,蛋白质的定点修饰是一项核心技术。它就像给蛋白质装上 “精准导航”,让其在诊断、治疗等场景中发挥定向作用。然而,传统的二硫键生物偶联技术一直受限于反应速度慢、产率低、稳定性不足等问题,且只能作用于含天然二硫键或经改造引入二硫键的蛋白质,大大限制了其应用范围。近日,发表在(JACS)上的一项研究提出了 StapleAld 和 LAP-StapleAld 两项创新技术,成功攻克了这些难题,为蛋白质生物偶联领域带来了革命性突破。
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二硫键作为蛋白质中常见的结构单元,本是生物偶联的理想靶点,但传统技术却难以充分利用:
现有二硫键再桥联试剂要么反应动力学缓慢,需要数小时甚至数十小时才能完成反应;
要么产物在谷胱甘肽等生物环境中稳定性差,无法满足实际应用需求。
对于缺乏天然胱氨酸二硫键的蛋白质,需通过引入非天然半胱氨酸来构建二硫键,这极易导致蛋白质错误折叠,丧失原有功能。
这些痛点长期制约着二硫键生物偶联技术的发展与应用。针对这些问题,研究团队开发的 StapleAld 技术展现出独特优势。该技术采用2-甲酰烯丙基羧酸盐作为二硫键再桥联试剂,不仅显著提升了反应的亲电性,还引入了醛基标签,为后续修饰提供了便利。
与传统试剂相比:
StapleAld 试剂反应速度极快,在生理条件下几分钟内即可实现定量转化,30 分钟内就能完成蛋白质的二硫键再桥联,产率高达 90%以上
其产物在含谷胱甘肽的生理环境中能稳定存在 74 小时以上,彻底解决了传统偶联物稳定性不足的问题。
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为了进一步扩大应用范围,研究团队将 StapleAld 技术与 LAP 标签技术相结合,开发出 LAP-StapleAld 技术。该技术通过脂酰化连接酶(LplA)催化,在蛋白质折叠后任意位点定点引入硫辛酸二硫键,完美规避了引入非天然半胱氨酸导致的蛋白质错误折叠问题。无论是蛋白质的末端位点还是内部柔性环区域,LAP-StapleAld 技术都能实现精准修饰,且不影响蛋白质的天然结构和功能。例如,在对增强型绿色荧光蛋白(eGFP)进行修饰时,其荧光特性全程保持不变,充分证明了该技术的温和性与特异性。
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在实际应用测试中,这两项技术表现出广泛的适用性和优异的性能。在 cyclic 肽修饰方面,StapleAld 技术仅用 20 分钟就实现了生长抑素和血管加压素的高效偶联,产率分别达到99%和95%,远超传统烯丙基砜试剂不到 50% 的产率。在蛋白质修饰中,对溶菌酶、麦芽糖结合蛋白、治疗性抗体曲妥珠单抗等多种蛋白质的修饰均取得成功。其中,曲妥珠单抗经修饰后,仍能特异性结合 HER2 受体,在活细胞成像实验中展现出清晰的靶向荧光信号,为抗体药物偶联物(ADC)的开发提供了新方案。
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更值得关注的是,LAP-StapleAld 技术在含天然二硫键的蛋白质修饰中同样表现出色。对含天然埋藏二硫键的维生素 B12 结合蛋白 BtuF 进行修饰时,该技术能够精准识别人工引入的硫辛酸二硫键,实现定点修饰,而不影响蛋白质的天然二硫键和结合功能。这一特性使其在复杂蛋白质修饰中具有独特优势,进一步拓展了技术的应用边界。
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StapleAld 和 LAP-StapleAld 技术的出现,不仅解决了传统二硫键生物偶联技术的诸多痛点,还极大地拓展了蛋白质定点修饰的应用范围。它们操作简便、反应快速、产率高、稳定性好,且具有位点通用性,为生物医学研究提供了强大的工具。在基础研究领域,可用于荧光标记、亲和标签引入等,助力蛋白质相互作用研究;在应用研究领域,有望加速抗体药物偶联物、诊断探针、蛋白质疗法等产品的开发进程。
参考文献:
Shaikh DS, Rajput S, Kalia D. Rapid and High-Yielding Disulfide Bioconjugation at Any Desired Site in Proteins. J Am Chem Soc. 2026 Jan 22.
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