师兄,我的培养基脱气少了一会,OCR 和 ECAR 的基线波动就很大
如果没有充分脱气,放入仪器后培养基里溶解的 CO₂ 会迅速逸出,导致 pH 持续上升,细胞代谢状态会受到影响,数据也就不能反映真实情况了。
崩溃!就凑合了这一步,一整周白干了!
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做细胞能量代谢检测都要注意哪些细节呢?这就以最常用的【ATP 产生速率检测】为例,为大家详解实验准备和操作方案:
实验前一天
1. 打开 Seahorse 代谢分析仪,使温度稳定。
2.对于贴壁细胞,用适当的细胞生长培养基将细胞以预先确定的密度接种到 Seahorse XF 微孔板(悬浮细胞在实验当天准备即可)。
3.在 37℃ 无 CO₂ 培养箱中过夜水化探针板。
4. 在 Wave 里设计实验或使用 ATP 产生速率实验模板(标准或诱导的实验)。根据特定实验设计,对模板进行必要的分组修改。
实验当天
1. 无菌条件下,往 100 mL Seahorse XF DMEM 培养基,pH 7.4 中添加 10 mM XF 葡萄糖,1 mM XF 丙酮酸钠,2 mM XF 谷氨酰胺。这些是推荐的起始条件;然而,所需的检测液组分可根据细胞类型或体外培养条件而改变。
2. 温热检测液到 37℃。
3. 37℃ 孵育直至准备使用。
注意:如果检测液与此配方有显著不同(即更高浓度的 XF 葡萄糖,XF 丙酮酸钠或 XF 谷氨酰胺和 / 或其他培养基添加剂),如有必要,检查检测液的 pH 值并调至 7.4,需按照 Buffer Factor Protocol 测定缓冲系数值。
准备 Seahorse XF 细胞培养微孔板:
对于贴壁细胞:
1. 从 37℃ CO₂ 培养箱中取出细胞培养微孔板,在显微镜下检查细胞以确认种板的一致性和正常的细胞形态。
2.弃去细胞培养微孔板中的细胞生长培养基。使用多通道移液器用预热的检测液洗细胞一次,然后置于 37℃ 无 CO₂ 培养箱中用检测液孵育 45~60 分钟。
3. 在开始 XF 实验前,再次弃去检测液并在每孔加入新鲜,预热的检测液。
对于悬浮细胞:
1. 从生长培养基中沉淀细胞,并用预热的检测液重悬。
2. 计数细胞,以这样一个浓度悬浮细胞,即 50 μL(XF96 / XFe96)或 100 μL(XFe24)细胞包含每孔所需要的细胞数,留 4 个没有细胞的孔作为背景校正孔。
3. 加入所需的细胞 / 孔,然后温和地离心使细胞贴壁。
4. 每孔轻轻加入检测液。实验前将板子放在 37℃ 无 CO₂ 的培养箱中孵育 45~60 分钟。
准备化合物储液(现配现用):
1. 轻弹试剂管子确保在打开管子前粉末在管子底部。
2. 按照下表,用适当体积的检测液重悬每种组分。旋涡震荡约 1 min 以确保化合物完全重悬。
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准备加入探针板加药孔中的化合物:按下表所示,每种化合物各用检测液配制 3 mL。推荐使用 1.5 μM 的寡霉素和 0.5 μM 的鱼藤酮 + 抗霉素 A(终浓度)。
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将化合物加入探针板加药孔中
标准实验- 在寡霉素和鱼藤酮/抗霉素 A 之前没有急性注射。将化合物加入已水化的探针板加药孔中:加药孔 A:寡霉素 加药孔 B:鱼藤酮/抗霉素 A
诱导实验- 注射一种测试化合物,加入加药孔 A 中,按如下所示:加药孔 A:实验化合物(急性注射)或溶剂对照 加药孔 B:寡霉素 加药孔 C:鱼藤酮 / 抗霉素 A
运行 XF 实时 ATP 速率测定
安捷伦科技有限公司是生命科学与研究领域的全球领导者,始终致力于提供前沿的分析解决方案与创新技术。在细胞代谢研究领域,安捷伦推出的 Seahorse XF 分析仪被誉为活细胞能量代谢实时检测的「金标准」,深受全球科研人员及药物开发专家的信赖。
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内容策划:沈佳钰
内容审核:朱晓芳
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