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烟酰胺助力非霍奇金淋巴瘤治疗

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撰文丨我的闺蜜老红帽

表达嵌合抗原受体(chimeric antigen receptors,简称CARs)的T细胞(CAR-T细胞)的工作原理是采用单链可变片段(single- chain variable fragments,简称scFv)靶向肿瘤特异性表面抗原,从而有效干预多种恶性血液病(hematologic malignancies),包括B细胞淋巴瘤【1】以及多发性骨髓瘤(multiple myeloma)【2,3】。当然,CAR-T细胞强有力的细胞毒性也带来了新的问题,比如CAR-T细胞也会随机的杀伤表达靶标抗原的健康细胞,虽然比例相对较低【4】。对于已经广泛应用的CD19 CAR-T细胞疗法来说,上述脱靶效应很可能导致健康B细胞耗竭【5,6】。目前为止,多种其他类型的CAR-T细胞疗法均因为靶向健康的组织,而对病人生命造成严重威胁【7,8,9】。之前有工作指出,CAR-T细胞在多种临床场景下具有明显抗肿瘤效果,且亲和力跨度较大,并且,目前临床所常见的多种CAR-T疗法,其CAR-T细胞亲和力均超出阈值。因此,靶向多种肿瘤抗原对新型低亲和力scFvs被研发出来,并构建入CAR-T细胞中,从而可以有效增强CAR-T细胞靶向肿瘤细胞的精准性、持续性以及高效性。当然,这类低亲和力scFvs广泛用于临床之前,还需要进行严苛的临床前评估。

近期,来自美国University of Maryland School of Medicine的Tim Luetkens研究组在SCIENCE TRANSLATIONAL MEDICINE上发表题为Systematic single amino acid affinity tuning of CD229 CAR T cells retains efficacy against multiple myeloma and eliminates on-target off-tumor toxicity的文章,就此类新型低亲和力scFvs进行了改进和评估。

作者之前的工作搭建出一类从已知高亲和力scFvs分离出低亲和力scFvs的方法,并通过此方法得到CD229 CAR-T细胞的低亲和力变体。CD229是SLAM(signaling lymphocyte-activation molecule)家族成员,在健康淋巴细胞上表达较低,但在多发性骨髓瘤细胞中表达相对较高。CD229 CAR-T在临床上通常用来治疗多发性骨髓瘤。高亲和力CD229 CAR-T细胞具有抗肿瘤效果,但与其他高亲和力CAR-T细胞类似,也具有明显的脱靶效应。

为了提升CD229 CAR-T细胞对多发性骨髓瘤细胞的靶向选择性,作者通过对CAR结合结构域采用单氨基酸置换的方法,降低了CAR的亲和力。为了检测CARs的选择性是否更为精准,作者通过固相结合方法(solid-phase binding assays)和基于生物膜层反射光干涉技术(biolayer interferometry)进行变体结合结构域筛选,并确定其对多发性骨髓瘤细胞以及正常细胞的细胞毒性。作者确定,与过表达c-Jun相偶联后,CD229 CAR结合结构域的亲和力在毫摩尔级别,而且,无论是在体内还是在体外,其杀伤肿瘤效率和经典CD229 CAR-T细胞相当,但是对健康淋巴细胞的细胞毒活性要明显降低。另外,低亲和力CD229 CAR-T细胞还呈现相对较低的胞啃作用,也就是靶标抗原从肿瘤细胞转输至CAR-T细胞,这也可能是此类CAR-T细胞存留时间较长的原因之一。上述结果也说明,虽然仍需要临床评估,降低CAR-T细胞亲和力,是一项可以有效改善CAR-T细胞疗法疗效和安全性的改进策略。

当然,降低CAR亲和力可能引起的后果是,CAR-T细胞并没有有效识别靶标抗原低表达的肿瘤细胞,从而降低其抗肿瘤活性。作者也发现,低亲和力CD229 CAR-T细胞并不能识别低表达CD229的细胞系RPMI-8226,而这一细胞系中肿瘤抗原水平要低于多发性骨髓瘤病人的肿瘤细胞。

综上所述,作者所展示系统性优化低亲和力scFvs的CD229 CAR-T细胞,无论是在体内还是体外,均可以提升其对肿瘤细胞的精准识别水平,提高细胞扩增效率以及抗肿瘤活性。

https://doi.org/10.1126/scitranslmed.add7900

制版人:十一

参考文献

1. M. Sadelain, CD19 CAR T cells.Cell171, 1471 (2017).

2. N. Raje, J. Berdeja, Y. Lin, D. Siegel, S. Jagannath, D. Madduri, M. Liedtke, J. Rosenblatt, M. V. Maus, A. Turka, L.-P. Lam, R. A. Morgan, K. Friedman, M. Massaro, J. Wang, G. Russotti, Z. Yang, T. Campbell, K. Hege, F. Petrocca, M. T. Quigley, N. Munshi, J. N. Kochenderfer, Anti- BCMA CAR T-cell therapy bb2121 in relapsed or refractory multiple myeloma.N. Engl. J. Med.380, 1726–1737 (2019).

3. A. Mullard, FDA approves 100th monoclonal antibody product.Nat. Rev. Drug Discov.20, 491–495 (2021).

4. M. A. Cheever, J. P. Allison, A. S. Ferris, O. J. Finn, B. M. Hastings, T. T. Hecht, I. Mellman, S. A. Prindiville, J. L. Viner, L. M. Weiner, L. M. Matrisian, The prioritization of cancer anti- gens: A national cancer institute pilot project for the acceleration of translational research.Clin. Cancer Res.15, 5323–5337 (2009).

5. S. Sun, H. Hao, G. Yang, Y. Zhang, Y. Fu, Immunotherapy with CAR-modified T cells: Tox- icities and overcoming strategies.J. Immunol. Res.2018, 2386187 (2018).

6. A. V. Hirayama, C. J. Turtle, Toxicities of CD19 CAR-T cell immunotherapy.Am. J. Hematol.94, S42–S49 (2019).

7. M. Mamonkin, R. H. Rouce, H. Tashiro, M. K. Brenner, A T-cell-directed chimeric antigen receptor for the selective treatment of T-cell malignancies.Blood126, 983–992 (2015).

8. X. Liu, N. Zhang, H. Shi, Driving better and safer HER2-specific CARs for cancer therapy.Oncotarget8, 62730–62741 (2017).

9. R. A. Morgan, J. C. Yang, M. Kitano, M. E. Dudley, C. M. Laurencot, S. A. Rosenberg, Case report of a serious adverse event following the administration of T cells transduced with a chimeric antigen receptor recognizing ERBB2.Mol. Ther.18, 843–851 (2010).

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