【2022年感染性疾病案例展示入围稿件】
作者:宋江勤1 胡福英2 李华顺3 田友军4 周君阳1
单位:湖北省天门市第一人民医院:1.检验科,2.呼吸内科,3.病理科,4.影像科
前言
侵袭性真菌病在临床上相对少见,其起病隐匿、临床症状不典型、病情进展迅速,早期病原学诊断较困难,病死率较高。总状横梗霉菌(Lichtheimiaramosa)是一种隶属于接合菌门、毛霉目、横梗霉属的真菌生物,免疫功能低下者易感[1],可导致毛霉菌病,其特征为菌丝侵犯血管,引起血栓形成及坏死,可导致鼻、脑、消化道及呼吸道等处病变[2]。毛霉菌目真菌很少感染免疫功能正常的宿主[3]。由于毛霉菌病发病急、进展快,传统检测方法阳性率低,一般抗菌治疗无效,预后差、病死率较高,而通常在患者病死后尸检才明确诊断,因此尽早确定病原菌对于改善预后、降低病死率,具有重要意义。
近年来,宏基因二代测序(mNGS)筛查病原体技术快速发展,mNGS测序通量高、速度快,理论上能检测所有已知病原体,对危重及疑难感染性疾病,可早期、快速、精准鉴定其病原体,为临床治疗提供依据[4-6]。现报道采用mNGS协助诊断毛霉菌病1例,以期为临床诊断和治疗侵袭性真菌病提供借鉴。
案例经过
1、病史与体格检查
患者,男性、51岁,因“间断胸痛、咳嗽5月余”于2020年9月21日于天门市第一人民医院呼吸内科治疗。患者曾于2020年3月26日因“胸痛3d”于本院呼吸内科治疗,查体:咽不红,双侧扁桃体不大,表浅淋巴结不大,双肺呼吸音粗糙,未闻及干湿啰音。结合病史、体格检查、辅助检查临床诊断为“病毒性肺炎,支气管扩张”,予以抗感染(莫西沙星)、抗病毒(阿比多尔)及对症支持治疗,住院12d,胸痛、胸闷、气促以及咳嗽等症状减轻出院。
患者因“胸痛不适伴活动后胸闷气短”,多次入院治疗,疗效欠佳。9月3日通过NGS检测其肺泡灌洗液(bronchoalveolar lavage fluid,BALF)(表2),结合病史、临床表现、辅助检查结果,确诊为毛霉菌病。患者于2020年9月21日入本院继续治疗。体格检查:患者神志清楚,咽部无充血,双侧扁桃体不大,表浅淋巴结未及肿大,右肺呼吸音稍减弱,未闻及干湿啰音,心界不大、心音可、律齐、无杂音。既往史:伴急性肾功能不全史;无高血压、冠心病、糖尿病、肺结核、肝炎病史;有参麦过敏史。发病以来,食欲减退、精神稍差。
2 . 辅助检查
患者3月21日入院后查血常规,中性粒细胞比率78.5%(正常值:40%~75%),淋巴细胞比率14.70%(正常值:40%~75%)。白细胞介素6(interleukin-6,IL-6)28.68pg/ml(正常值:<7pg/ml);肝肾功能、凝血功能、红细胞沉降率(erythrocyt e sedimentation rate,ESR)、呼吸道病毒(嗜肺军团菌、肺炎支原体、肺炎衣原体、Q热立克次体、腺病毒、呼吸道合胞病毒、甲型流感病毒、乙型流感病毒、副流感病毒)无明显异常,新型冠状病毒核酸检测阴性。自4月3日起,患者ESR开始升高。8月18日查抗可溶性抗原(extractable nucler antigen,ENA)、免疫球蛋白IgG、IgA、IgM,补体C3、C4,无明显异常。患者病程中血常规指标变化详见表1。
2020年5月前往上海A医院呼吸内科住院治疗,血液T-Spot:阴性;寄生虫专项检测(10项)均阴性。全身 PET/CT示:右肺炎性病变可能;双肺慢性炎性小结节可能;两肺慢性炎症;右侧胸腔积液;右上肺胸膜下占位穿刺组织病理结果示:见少许横纹肌组织及大片坏死,特殊染色未见阳性菌。肺组织 mNGS:细菌、病毒真菌、寄生虫、分枝杆菌等均阴性。考虑“不明病原体急性感染后坏死 ”可能,予「阿莫西林胶囊0.5tid+多西环素0.1bid」口服1 个月。
2020年9月前往广州B医院呼吸内科住院治疗,病毒:血传播八项:阴性;九项呼吸道感染病原体IgM抗体检测阴性;细菌:PCT:0.07ng/mL,C反应蛋白4.16mg/dL,细菌涂片阴性,培养阴性,冷凝集试验<1:4;真菌:血液G和GM试验;血液曲霉和隐球菌抗原阴性;烟曲霉(IgE-m3),总IgE测定阴性;结核:痰结核涂片,TB-DNA,X-pert,分枝杆菌菌种鉴定(DNA微阵列芯片法)等均阴性;血 T-spot:抗原A(ESAT-6)孔6 ↑ 个,抗原B(CFP-10)孔9 ↑ 个,阴性对照孔0 个,阳性对照孔>100个。肺肿瘤:肺肿瘤五项阴性;结缔组织病:血沉90mm/h;血清淀粉样蛋白A >200mg/L;风湿三项,抗核抗体普十一项阴性;免疫球蛋白G4 1.37g/L;血管炎性疾病:血管炎五项,抗心磷脂抗体,免疫八项等为阴性;过敏性疾病:总IgE(TIgE),曲霉IgE(m3)均为阴性;其他:肝功八项,血气分析,CX3生化八项,心梗鉴别六项,凝血功能,肾功能等大致正常;细菌涂片二项(抗酸染色+革兰染色)阴性;普通细菌培养阴性;曲霉菌抗原检测:5.6114ug/L(<0.5),隐球菌抗原:阴性;结核T-Spot,TB-DNA,肺结核分枝杆菌(DNA微阵列芯片法)等均阴性。
该患者首次入院胸部X线计算机断层摄影(computed tomography,CT)(图1A)提示双肺感染性病变,双肺见多发斑片状磨玻璃影,边缘模糊,以右下肺病灶较为明显,双侧胸膜增厚黏连。患者出院后反复胸痛不适,4月23日再次入院,复查胸部CT(图1B)提示:双肺见多发斑片状及条片状高密度灶,部分病灶边缘模糊,右肺下叶病灶较前稍增大,右肺上叶前段新增小片状磨玻璃密度灶,左肺下叶病灶体积稍缩小。5月29日复查胸部CT(图1C)提示双肺见多发斑片状及条索状高密度灶,边界不清,邻近胸膜增厚、粘连,右上肺及下肺病灶范围无明显缩小。8月29日复查胸部CT(图1D)提示:双肺内见多发斑片状及条索状高密度灶,双肺下叶部病灶范围稍缩小,右肺上叶及左肺下叶可见新增磨玻璃样及片状实性高密度影,边界欠清晰。10月1日复查胸部CT(图1E)右上肺部分病灶内见空洞形成,双肺下叶部分病灶范围扩大,右侧胸腔积液增多,磨玻璃影未见。10月12日复查胸部CT(图1F)示:较前片(10月1日),大部分病灶范围缩小,右上肺空洞较前稍缩小,右侧胸腔积液基本消失。
图1患者胸部CT:A:3月26日CT示双肺感染性病变。B:4月22日CT示右下肺见斑片状高密度灶,病灶范围较前明显增大。C:5月29日CT示右上肺及下肺病灶范围无明显缩小。D:8月29日CT示右肺上叶及左肺下叶可见新增磨玻璃样及片状实性高密度影。E:10月1日CT示部分病灶内见空洞形成,磨玻璃影未见。F:10月12日CT示大部分病灶范围稍缩小,右上肺空洞较前缩小。
3.病理学
4月24日患者行CT引导下经皮肺活检术,组织活检提示:部分肺泡组织凝固性坏死(见图2);真菌荧光染色为阴性。
4.肺组织病原学检查
4月24日患者肺组织革兰染色示案例分析:未发现细菌、真菌菌丝及孢子;组织培养(普通细菌、厌氧菌、真菌)示无细菌生长。
5.肺泡灌洗液宏基因二代测序
检出微生物主要为横梗霉属总状横梗霉菌,序列数为260,相对丰度为52.95%;耐药基因未检出,见表2。
患者于2020年9月21日转入本院继续治疗,根据患者病史、临床表现,mNGS以及CT等结果,考虑患者为肺部真菌感染,病原菌为总状横梗霉菌,自2020年9月5日开始使用两性霉素B抗真菌治疗,剂量:30mg/10h,静脉泵入。住院期间多次查血钾偏低,尿素、肌酐增高,行补钾、护肾等对症治疗。10月12日复查胸部CT示大部分病灶范围缩小,右上肺空洞减小(图1F),患者咳嗽、胸闷等症状缓解出院,后转为门诊治疗,期间定期复查胸部CT、血常规及肝肾功能,至2021年6月疗程结束。
案例分析
临床医师
本例患者于2020年3月出现右侧胸痛,运动后疼痛加重,气促明显,无头痛发热,无咳嗽咯痰。时值新型冠状病毒肺炎流行,患者为湖北医务工作者,胸部CT示感染性病变,根据病史、临床表现及CT结果,行抗病毒、抗感染治疗,疗效欠佳。患者后因“胸痛”多次住院,给予多种抗感染治疗方案,病情均无明显改善,并于8月份加重,出现磨玻璃影及胸腔积液,胸痛不适加重,伴活动后胸闷气短。利用mNGS检测其BALF提示总状横梗霉菌感染,临床考虑毛霉菌病,经两性霉素B治疗后,患者双肺病灶减小,胸痛症状减轻,咳嗽完全缓解,疗效明显。两性霉素B可导致药物性低钾以及肾脏损伤,患者住院期间多次查血钾偏低,尿素、肌酐增高,提示应定期监测服用两性霉素B患者的电解质、肾功能指标(尿素和肌酐),注意补钾和保护肾功能。
检验医师
该患者主要特征为肺部阴影伴空洞,伴有胸痛,考虑感染性疾病和非感染性疾病,感染性疾病病原体考虑分枝杆菌、真菌、其他特殊病原体感染、肺外感染累及肺部,支持点有胸痛症状、PCT:0.07ng/ml,C反应蛋白:4.16mg/dl,t-spot阳性,影像学倾向于感染性疾病,肺组织病例提示凝固性坏死,不支持点有无病原学依据,外院抗感染效果不佳。非感染性疾病考虑恶性肿瘤、机化性肺炎、过敏性肺炎、肺栓塞。非感染性疾病支持点有胸痛症状,血沉90mm/L,血清淀粉样蛋白A>200mg/L,影像学肺部阴性伴空洞,不支持点有结缔组织疾病、血管炎、肺肿瘤标志物等均阴性,肺组织病理未见肿瘤细胞,全身PET-CT未见其他部位的肿瘤,本院肺动脉CT造影未见栓塞。
患者考虑感染性疾病的可能性大,但经历两次经皮肺穿活检,组织相关的病原学检查均为阴性,T-SPOT检查为阳性,但其他的涂片、培养及MTB-DNA相关检查均为阴性,再加之多种抗生素抗感染无效,考虑少见病原体的感染,常规培养无法检出。
知识拓展
毛霉目真菌在土壤、粪便、禾草及空气等环境中广泛存在[7]。尸检研究表明,毛霉真菌是侵入性真菌感染中常见的致病菌[8-9];据统计,2007至2015年,欧洲毛霉菌病发病率不断上升,其中以根霉属最常见[10]。毛霉菌病是一种发病急、进展快、病死率极高的系统性条件致病性真菌感染。免疫功能低下者易感,尤其是患有糖尿病、白血病、免疫功能缺陷性疾病、恶性肿瘤患者;大剂量使用抗菌药物、皮质类固醇激素患者最易感染[11]。该病起初多发于鼻黏膜或鼻窦,继而扩展至眼眶软组织、面腭及脑,也可全身性播散,预后较差。毛霉目真菌感染肺部的病例罕见[12],本例患者既往体健,无高血压、冠心病、糖尿病、肺结核病史等慢性病史,未大剂量使用抗菌药物、激素,不属毛霉目真菌易感人群,且发病特点及临床表现不典型,因此不能忽视免疫功能正常的人群也能发生毛霉菌病。
案例总结
本例患者在发病初期行组织真菌荧光染色、组织培养、组织革兰染色,结果均为阴性,未能明确病原体。特别是在本院及A医院的肺穿组织培养及mNGS均未检出病原菌,组织病理的荧光染色也未见菌丝,而B医院BALF的mNGS检出致病菌(总状横梗霉菌),给临床医生造成困扰,作为检验人员考虑可能是穿刺组织为坏死组织,其中并不含病原体或者病原体已经死亡裂解,这样会导致穿刺组织好培养阴性或者mNGS阴性。
侵袭性真菌病的诊断通常依赖于真菌培养和活检组织检查,但阳性率较低,毛霉菌病患者易错过最佳治疗时间[13];尸检有助于明确诊断,但因其滞后性,对临床治疗意义较小[14-15]。G试验是临床检测真菌抗原的常规方法[16],但毛霉菌不产生抗原物质,故G试验对毛霉菌诊断价值较低。对于侵入性真菌感染的诊断,真菌培养(传统“金标准”)检测周期长,阳性率较低;G试验和GM试验的结果缺乏特异性,灵敏度较差。
相比传统基因检测方法,mNGS检测具有明显技术优势和广泛的临床用途[17-18]。mNGS可一次性产生覆盖基因组特定区域(从数个基因到数百个基因以至全外显子组或全基因组)的高通量测序数据[19],可同时检测多种细菌、病毒、真菌或寄生虫的DNA/RNA序列,且准确率高[20]。mNGS检测费用较高,但相比传统检测方法,单基因单位点的平均检测费用更低,大部分患者可负担[21]。mNGS灵敏度高于传统临床检验方法[22]。mNGS可为复杂感染的诊断提供直接线索[23]。考虑到毛霉菌病的高病死率,对于不明原因的重症肺炎,可将mNGS作为常规检测[24]。
专家点评
毛霉菌病发病急、进展快、病死率极高,早期诊断和选择敏感抗真菌药物治疗是患者获得良好预后的关键[25]。本例通过mNGS检测确定不明原因肺部感染者的病原体(总状横梗霉菌),并根据mNGS检测报告调整其治疗方案,疗效较好。因侵入性真菌感染诊断困难,对于不明原因肺炎患者(特别是高度怀疑毛霉菌病患者),mNGS应成为常规检测手段。可根据mNGS及其他检查结果,确定感染病原体,选用敏感药物,提高毛霉菌病的治愈率。
总之,mNGS可对侵袭性真菌病做出准确快速的病原学诊断并提供治疗依据。(胡福英 天门市第一人民医院呼吸与危重症医学科副主任医师)
志谢:感谢碧迪医疗器械(上海)有限公司对【2022年全国感染性疾病检验与临床案例展示活动】的大力支持!
参考文献
[1] Kutlu M, Ergin C, Bir F,et al. Pulmonary mucormycosis due to Lichtheimia ramosa in a patientwith HIV infection[J].Mycopathologia,2014,178(1-2):111-115.
[2] Trastoy R, Manso T, Garc aX, et al. Pulmonary co-infection due to Nocardia cyriacigeorgica andAspergillus fumigatus[J]. Rev EspQuim ioter,2017,30(2):123-126.
[3] Ribes JA, Vanover-Sams CL,Baker DJ. Zygomycetes in humandisease[J]. Clin MicrobiolRev,2000,13(2):236-301.
[4] Sintchenko V, Holmes EC.The role of pathogen genomics in assessing disease transmission[J].BMJ,2015,350:h1314.
[5] 林爱清,张璐,成宝涛,等.二代测序技术应用于脑脊液检测在结核性脑膜炎中的早期诊断价值[J/CD].中华实验和临床感染病杂志(电子版),2020,14(4):291-295.
[6] 杨理,顾佳,龙筱露,等.利用高通量宏基因组测序技术检测血液病患者感染性病原体的横断面研究[J/CD].中华实验和临床感染病杂志(电子版),2020,14(2):99-103.
[7] Alastruey-Izquierdo A,Hoffmann K, de Hoog GS, et al. Speciesrecognition and clinicalrelevance of the zygomycetous genusLichtheimia (syn. Absidia proparte, Mycocladus)[J]. J ClinMicrobiol,2010,48(6):2154-2170.
[8] Kurosawa M, Yonezumi M,Hashino S, et al. Epidemiology and treatment outcome of invasivefungal infections in patients withhematological malignancies[J]. IntJ Hematol,2012,96(6):748- 757.
[9] Shimodaira K, Okubo Y,Nakayama H, et al. Trends in the prevalence of invasive fungalinfections from an analysis of annual records ofautopsy cases of TohoUniversity[J]. Mycoses,2012,55(5):435-443.
[10] Guinea J, Escribano P,Vena A, et al. Increasing incidence ofmucormycosis in a large Spanishhospital from 2007 to 2015:Epidemiology and microbiologicalcharacterization of the isolates[J].PLoS One,2017,12(6):e179136.
[11] Zhang Q, Liu H, Qiu S, etal. A rare case of pulmonary coinfectionby Lichtheimia ramosa andAspergillus fumigatus in a patient withdelayed graft function afterrenal transplantation[J]. TransplantProc,2019,51(2):551-555.
[12] Gerlach MM, Lippmann N,Kobelt L, et al. Possible pulmonary Rhizopus oryzae infection in apreviously healthy child after aneardrowning incident[J].Infection,2016,44(3):361-364.
[13] Zhang K, Yu C, Li Y, etal. Next-generation sequencing technology for detecting pulmonaryfungal infection in bronchoalveolar lavage fluid of a patient withdermatomyositis: a case report and literature review[J]. BMC InfectDis,2020,20(1):608.
[14] Szelnyi H, Foss HD,Kreuser ED, et al. Fatal Mucor pneumonia after treatment with2-chlorodeoxyadenosine fornon-Hodgkin’slymphoma[J]. AnnHematol,1996,73(3):145-147.
[15] Hamdi T, Karthikeyan V,Alangaden GJ. Mucormycosis in a renaltransplant recipient: casereport and comprehensive review ofliterature[J]. Int JNephrol,2014,2014:950643.
[16] Hope WW, Walsh TJ,Denning DW. Laboratory diagnosis of invasiveaspergillosis[J]. LancetInfect Dis,2005,5(10):609-622.
[17] 郑微,赵鹏,张永宏,等.宏基因组测序技术分析原发性肝癌患者肠道菌群特征[J/CD].中华实验和临床感染病杂志(电子版),2021,15(3):149-157.
[18] 刘鑫喆,滑明溪,王慧珠,等.基于全基因组序列的耐碳青霉烯鲍曼不动杆菌的耐药与毒力研究[J/CD].中华实验和临床感染病杂志(电子版),2020,14(5):367-373.
[19] Zhang X, Liang Z, Wang S,et al. Application of next-generation sequencingtechnology to precision medicine incancer: jointconsensus of theTumor Biomarker Committee of the Chinese Societyof ClinicalOncology[J]. Cancer Biol Med,2019,16(1):189-204.
[20] Long Y, Zhang Y, Gong Y,et al. Diagnosis of sepsis with cell-freeDNA by next-generationsequencing technology in ICU patients[J].Arch MedRes,2016,47(5):365-371.
[21] 周彩存,王洁,程颖,等.二代测序技术在NSCLC中的临床应用中国专家共识(2020版)[J].中国肺癌杂志,2020,23(9):741-761.
[22] 刘孝荣,马东礼,姜含芳,等.高通量测序方法在重症肺炎病原体检测的应用[J].中华检验医学杂志,2017,40(8):609-613.
[23] Yohe S, Thyagarajan B.Review of clinical next-generationsequencing[J]. Arch Pathol LabMed,2017,141(11):1544-1557.
[24] Boers SA, Jansen R, HaysJP. Understanding and overcoming thepitfalls and biases ofnext-generation sequencing (NGS) methods foruse in the routineclinical microbiological diagnostic laboratory[J].Eur J ClinMicrobiol Infect Dis,2019,38(6):1059-1070.
[25] Kaneko Y, Oinuma KI,Terachi T, et al. Successful treatmentof intestinal mycosis caused bya simultaneous infection withLichtheimia ramosa and Aspergilluscalidoustus[J]. InternMed,2018,57(16):2421-2424.
说明:本文为原创投稿,不代表检验医学新媒体观点。转载时请注明来源及原创作者姓名和单位。
近期直播推荐
编辑:笪文武 审校:陈雪礼
特别声明:以上内容(如有图片或视频亦包括在内)为自媒体平台“网易号”用户上传并发布,本平台仅提供信息存储服务。
Notice: The content above (including the pictures and videos if any) is uploaded and posted by a user of NetEase Hao, which is a social media platform and only provides information storage services.