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Nature | 分泌组mRNA翻译的空间异质性:LNPK与溶酶体共同塑造分泌组合成

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撰文 | 阿童木

在真核细胞中,内质网(ER)是分泌蛋白和膜蛋白合成的关键平台。传统观点认为,ER片层区域(sheets, 粗面ER)富含膜结合多聚核糖体,因此被视为分泌组(Secretome)mRNA翻译的主要场所【1】。然而,随着冷冻电镜断层扫描与空间转录组等新技术的出现,研究者逐渐认识到核糖体并不局限在粗面ER上,而是分布于整个ER网络,包括大量的管状结构以及管状之间形成的连接处【2】。这些观察提示,ER的结构比此前理解的更为复杂,而翻译活动可能在这些结构中呈现空间差异,因而“粗面ER=翻译中心”的经典模式开始受到挑战。

进一步研究发现,并非所有ER结合核糖体都处于活跃的翻译状态。许多核糖体,尤其是60S亚基,以非翻译的方式结合在ER膜上,可能代表一种预装配或起始调控状态【3】,而如何在亚细胞尺度上精确定位这些翻译事件,仍是技术难点。当前研究中的一个思路是通过标记Sec61复合物或TRAP等转位通道成分来追踪翻译位点【4】,但这类操作往往干扰其天然功能;同时,由于膜内表位的空间受限,免疫标记的分辨率也不足。

一个关键问题在于,分泌组mRNA究竟是在特定的ER亚域中优先翻译,还是在连续的ER网络上广泛而均匀地合成,目前仍不甚清楚。回答这一问题,对理解ER结构与翻译机制之间的耦合具有基础性意义。

近日,HHMI Janelia Research Campus的Jennifer Lippincott-Schwartz实验室等在

Nature
杂志发表了题为
Secretome translation shaped by lysosomes and lunapark-marked ER junctions
的研究文章, 首次建立了分泌组翻译的空间模型:分泌组mRNA的翻译优先发生在LNPK标记的ER连接处,而这些连接处与溶酶体形成紧密界面,利用局部氨基酸供给和eIF2起始调控提升翻译效率。ER结构、溶酶体代谢与翻译机器因此被整合为一个功能单元,改变了传统的“粗面ER=翻译中心”这一经典理论,为理解细胞在高分泌负荷、应激或营养变化中的蛋白合成调节提供了新的视角。


为可视化分泌组合成的空间位置,作者构建MS2报告子实时追踪mRNA,并结合SunTag体系标记新生肽链。单颗粒追踪显示,分泌组mRNA在翻译时呈现高度受限的运动行为,且几乎始终依附于ER;当嘌呤霉素终止翻译后,这些mRNA移动速度提升约十倍并易从ER解离。SunTag信号进一步确认,受限点对应活跃翻译,而移动点则为非翻译状态,与非分泌组mRNA在细胞质中的自由扩散截然不同。多种报告子在翻译期间均呈现明显的受限运动,反映其在共翻译易位过程中被锚定于ER膜,而β-actin、Sec61β等非分泌组mRNA则主要保持移动,说明分泌组翻译具有ER结构性锚定特征。

在对ER外周区域的成像中,作者发现翻译中的分泌组mRNA显著富集在ER连接处这一狭窄微区,而非均匀分布于整个ER网络。内源CD9 mRNA经HCR-smFISH进一步证实这一特征。与此同时,核糖体追踪也表明,只有与翻译活性匹配的核糖体亚群会定位在ER连接处,而嘌呤霉素处理可使其迅速转为快速移动状态。这些结果共同证明,ER连接处是分泌组mRNA与核糖体翻译的主要热点。

LNPK作为ER连接处的标记蛋白,相关研究已表明其参与ER连接结构的形成与稳定。作者发现LNPK–GFP选择性存在于部分ER连接处,并且在SunTag体系中,翻译阳性新生链有高达80%位于LNPK信号300 nm以内,而非翻译点与LNPK的空间关联显著较弱,说明LNPK标记的ER连接处是分泌组翻译的优先“工位”。

当LNPK被敲低或敲除后,这一空间组织被破坏:翻译中的分泌组mRNA移动性上升,翻译比例显著下降;相应地,cytERM-SunTag信号减少,膜蛋白的新生合成降低,而总蛋白水平和整体翻译几乎不变。蛋白质组与转录组联合分析显示,膜蛋白的蛋白/mRNA比值普遍下降,进一步证明LNPK对分泌组与膜蛋白翻译至关重要。

为了确定LNPK调控的空间环境是否涉及溶酶体,作者进行了PLA近邻连接分析。结果显示LNPK与溶酶体标记LAMP1存在显著近邻关系,而与早期内体和线粒体无明显关联。光遗传诱导实验进一步表明,在野生型细胞中,溶酶体可迅速被招募至ER连接处,而LNPK缺失显著减缓这一过程,说明LNPK不仅标记ER结构,也促进ER-溶酶体接触的形成。

更关键的是,溶酶体邻近并非被动伴随,而是直接增强翻译本身,翻译中的cytERM-SunTag信号在靠近LAMP1阳性溶酶体时显著增强(核糖体增多)。受限运动的SiT-EGFP–MS2也更倾向靠近溶酶体,而非翻译状态不存在这种偏好。此外,LNPK失活可消除溶酶体邻近引发的翻译增强效应。因此,LNPK介导的ER-溶酶体界面是调控分泌组翻译的必需结构。

溶酶体蛋白降解释放氨基酸,为起始阶段提供关键底物。实验显示,氯喹提升溶酶体pH或抑制溶酶体蛋白酶均可降低分泌组翻译。而在氨基酸饥饿条件下,尽管整体翻译下降,溶酶体邻近区域的翻译反而更活跃,这体现了局部氨基酸供给对分泌组翻译的重要性。

机制层面上,LNPK缺失细胞分泌组翻译的下降主要源于起始受阻:整合应激反应抑制剂(ISRIB)能够恢复翻译,而mTOR抑制剂无效,说明分泌组翻译缺陷来自整合应激反应(ISR)通路而非mTOR。此外,LNPK缺失伴随eIF2α磷酸化比例升高,但并未激活典型ISR特征(如ATF4诱导或XBP-1剪接),且抑制主要集中在膜蛋白和分泌蛋白翻译。整体来看,LNPK缺失触发的抑制依赖eIF2α,但不伴随典型的ISR转录程序,而是选择性降低分泌组翻译。


综上所述,本研究利用活细胞单分子成像首次明确揭示了分泌组mRNA的翻译并不是在ER上随处发生,而是集中在富含Lunapark(LNPK)的ER连接处,这些区域与溶酶体紧密邻近。LNPK的存在决定了这些位置的翻译活性,而溶酶体的代谢状态则进一步调节局部核糖体密度。此外,LNPK耗竭会降低分泌组mRNA的翻译效率,这一缺陷依赖eIF2起始通路;氨基酸匮乏会加强溶酶体邻近的翻译偏好,而溶酶体pH中和或蛋白酶抑制则抑制翻译。整体而言,分泌组翻译受到ER结构特征与溶酶体供氨基酸能力的双重调控。

https://doi.org/10.1038/s41586-025-09718-0

制版人: 十一

参考文献

1. Reid, D. W. & Nicchitta, C. V. Diversity and selectivity in mRNA translation on the endoplasmic reticulum.Nat. Rev. Mol. Cell Biol.16, 221–231 (2015).

2. Heinrich, L. et al. Whole-cell organelle segmentation in volume electron microscopy.Nature599, 141–146 (2021).

3. Zhang, Z. et al. A subcellular map of translational machinery composition and regulation at the single-molecule level.Science387, eadn2623 (2025).

4. Snapp, E. L., Reinhart, G. A., Bogert, B. A., Lippincott-Schwartz, J. & Hegde, R. S. The organization of engaged and quiescent translocons in the endoplasmic reticulum of mammalian cells.J. Cell Biol.164, 997–1007 (2004).

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