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【勃林格特约·技术专栏】母猪免疫支原体:把防控关口前移到感染链起点

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母猪免疫支原体:把防控关口前移到感染链起点【勃林格特约·技术专栏】

从母源抗体、T细胞到早期定植与下游肺脏改善

【核心观点】猪免疫不是替代仔猪免疫,而是通过降低母猪群感染压力、增强母源免疫并延迟仔猪早期定植,为商品猪争取更完整的免疫窗口。

一、为什么防控要从母猪开始?

猪肺炎支原体(Mycoplasma hyopneumoniae,Mhp)可在母猪群中亚临床循环,并由母猪向哺乳仔猪传播。后备母猪和低胎次母猪更容易处于感染、排菌或免疫不稳定阶段,因此可能成为产房早期感染的重要来源。

早期定植并不一定马上表现为咳嗽,却可能影响后续整个生长周期。Fano等发现,断奶时Mhp定植水平与屠宰时平均肺病变评分、肺脏损伤的比例、支气管病原检出和血清转阳均呈正相关。因此,防控目标不应仅是“育肥期少咳嗽”,更应是降低母猪群感染压力,尽量把仔猪首次感染时间向后推。

二、母猪免疫提供的不只是抗体

1. 母源抗体:建立出生早期的第一道缓冲

母猪产前免疫可提高血清和初乳中的Mhp特异性IgG、IgA,并通过初乳传递给仔猪。但需要注意,血清抗体水平并不等同于保护力,且疫苗抗体与感染抗体通常难以通过常规ELISA区分。因此,抗体更适合用于判断免疫暴露和母源传递,不宜作为疫苗免疫效果的评价标准。

2. 母源T细胞:补上新生仔猪的细胞免疫窗口

Biebaut等证实,妊娠后期免疫支原体疫苗( Ingelvac MycoFLEX,勃林格)可诱导母猪产生Mhp特异性多功能T细胞,这些细胞可经初乳转移至新生仔猪。免疫母猪后代在2日龄时可检测到更多产生IFN-γ、TNF-α的Mhp特异性T细胞,而对照母猪后代未见相同反应。早期研究也证实,免疫母猪可向仔猪被动转移具有功能的Mhp特异性细胞免疫。

这意味着母猪免疫的价值不再只是“提高初乳抗体”,还可能在仔猪自身免疫系统尚未成熟时,提前提供病原特异性的细胞免疫支持,而细胞免疫对于猪肺炎支原体的防控是至关重要的。

3. 母源免疫与仔猪免疫可以协同

母源抗体可能削弱仔猪免疫后的血清抗体应答,但并不等于仔猪免疫无效。研究显示,在存在母源免疫的情况下,仔猪仍可建立Mhp特异性淋巴细胞增殖和细胞免疫反应。田间长期随访进一步发现,仔猪免疫后即使未出现明显血清转阳,Mhp特异性T细胞增殖反应仍可持续至育肥末期。

三、母猪免疫的临床价值:从产房影响到屠宰场

母猪免疫的实际价值,应以仔猪感染时间、病原检出、咳嗽、肺脏评分和生产性能等结果综合评价,而不是只看母猪或仔猪抗体。

  • 降低早期感染风险:母猪免疫有机会降低母猪向仔猪传播的感染压力,使仔猪在断奶前后保持较低定植水平。该效果会受到猪场基础感染压力、母猪群稳定性和后备母猪驯化质量影响。

  • 减少屠宰时肺脏病变:Sibila等的随机对照研究显示,免疫母猪后代在屠宰时的地方流行性肺炎样肺病变均值低于未免疫母猪后代,而母猪和仔猪定植率差异未达到显著水平。

  • 更适用于感染压力较大的猪场:Arsenakis等在两个猪场开展研究。在基础感染压力较高的猪场,免疫母猪后代在断奶后7天的定植率和屠宰时肺病变评分显著降低;另一猪场未观察到显著差异。这提示母猪免疫更适合于猪肺炎支原体的感染链的切断。

四、结论:母猪免疫的四个核心优势

1.降低母猪群感染与排菌压力,减少产房暴露;

2.通过初乳传递Mhp特异性抗体,提供早期免疫缓冲;

3.向仔猪转移功能性T细胞,支持早期细胞免疫;

4.延迟仔猪定植,在高感染压力下,能够降低下游肺脏病变。

母猪免疫并非“一针解决全部问题”。更合理的策略是:后备母猪充分隔离与驯化、母猪群稳定化、母猪免疫、仔猪免疫、生物安全与连续监测协同实施。评价效果时,应优先关注断奶前后病原检出、生产性能改善、感染时间、咳嗽及屠宰肺评分,而不是单一抗体滴度。

参考文献

1. Biebaut E, Chantziaras I, Boyen F, Devrendt B, Haesebrouck F, Gomez-Duran CO, et al. Influence of parity and reproductive stage on the prevalence of Mycoplasma hyopneumoniae in breeding animals in Belgian farrow-to-finish pig herds. Porcine Health Manag. 2022;8:26. doi:10.1186/s40813-022-00267-w.

2. Pieters M, Cline GS, Payne BJ, Prado C, Ertl JR, Rendahl AK. Intra-farm risk factors for Mycoplasma hyopneumoniae colonization at weaning age. Vet Microbiol. 2014;172(3-4):575-580. doi:10.1016/j.vetmic.2014.06.012.

3. Fano E, Pijoan C, Dee S, Deen J. Effect of Mycoplasma hyopneumoniae colonization at weaning on disease severity in growing pigs. Can J Vet Res. 2007;71(3):195-200. PMID:17695594.(该文献检索记录未列DOI)

4. Biebaut E, Beuckelaere L, Boyen F, Haesebrouck F, Gomez-Duran CO, Devrendt B, et al. Transfer of Mycoplasma hyopneumoniae-specific cell-mediated immunity to neonatal piglets. Vet Res. 2021;52:96. doi:10.1186/s13567-021-00968-0.

5. Bandrick M, Pieters M, Pijoan C, Molitor TW. Passive transfer of maternal Mycoplasma hyopneumoniae-specific cellular immunity to piglets. Clin Vaccine Immunol. 2008;15(3):540-543. doi:10.1128/CVI.00466-07.

6. Bandrick M, Theis K, Molitor TW. Maternal immunity enhances Mycoplasma hyopneumoniae vaccination-induced cell-mediated immune responses in piglets. BMC Vet Res. 2014;10:124. doi:10.1186/1746-6148-10-124.

7. Biebaut E, Beuckelaere L, Boyen F, Haesebrouck F, Gomez-Duran CO, Devrendt B, et al. Long-term follow-up of Mycoplasma hyopneumoniae-specific immunity in vaccinated pigs. Vet Res. 2023;54:16. doi:10.1186/s13567-023-01145-1.

8. Sibila M, Bernal R, Torrents D, Riera P, Llopart D, Calsamiglia M, et al. Effect of sow vaccination against Mycoplasma hyopneumoniae on sow and piglet colonization and seroconversion, and pig lung lesions at slaughter. Vet Microbiol. 2008;127(1-2):165-170. doi:10.1016/j.vetmic.2007.07.027.

9. Arsenakis I, Michiels A, Schagemann G, Gomez-Duran CO, Boyen F, Haesebrouck F, et al. Effects of pre-farrowing sow vaccination against Mycoplasma hyopneumoniae on offspring colonisation and lung lesions. Vet Rec. 2019;184(7):222. doi:10.1136/vr.104972.

注:文中证据表述基于上述原始研究,田间效果受基础感染压力、管理和免疫程序影响。

【版面编辑】谢莹影

【内容采写】王 刚

【内容审核】李 丹

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