在mRNA技术迅猛发展的今天,一项来自韩国首尔国立大学的研究成果,正为疫苗和治疗药物注入新活力。2025年11月7号,《Nature Biotechnology》杂志在线发表了由金恩姬(V. Narry Kim)教授领导的团队论文,他们通过大规模病毒序列筛选,识别出11种新型RNA稳定性增强剂。这些元素能显著延长mRNA在体内的寿命,同时提升蛋白翻译效率,尤其适用于碱基修饰的mRNA疗法。这项发现有望解决mRNA疫苗稳定性不足的痛点,推动更耐用、低免疫原性的药物开发。
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mRNA技术自新冠疫苗问世以来,已革命性地改变了疫苗和治疗领域。但其核心挑战在于mRNA在体内的稳定性有限,一旦进入细胞质,mRNA易被快速降解,导致蛋白产生短暂且不充分。传统线性mRNA通过体外转录合成,带有5'端帽和poly(A)尾巴,并常使用假尿苷(Ψ)、N1-甲基假尿苷(m1Ψ)等修饰碱基来降低双链RNA副产物,减少免疫激活。然而,这些修饰虽能抑制免疫传感器如蛋白激酶R和TRIM25,但无法有效对抗去腺苷化过程——这是mRNA降解的限速步骤,由CCR4-NOT复合物主导,导致poly(A)尾巴缩短,最终引发尿苷化和脱帽降解。现有替代方案如环状RNA(circRNA)或自扩增RNA(saRNA)虽更耐用,但面临翻译效率低、修饰不兼容或制造复杂等问题,限制了临床应用。
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为克服这些局限,研究团队从病毒中寻找灵感。病毒作为进化高手,常利用宿主机制稳定自身RNA。他们编译了337种病毒物种、297个属的基因组序列,总计196,277个197核苷酸的平铺片段,构建了一个覆盖七大巴尔的摩分类系统的病毒库。这远超以往筛选的广度和深度,包括双链DNA病毒如疱疹病毒,以及单链RNA病毒如皮科纳病毒。初筛阶段,他们将这些片段插入增强绿色荧光蛋白(EGFP)的3'非翻译区(UTR),整合到HEK293T细胞中,通过荧光激活细胞分选(FACS)富集高表达细胞,获得10,784个潜在增强剂。次筛则聚焦m1Ψ修饰mRNA,使用脂质纳米颗粒(LNP)递送荧光素酶报告mRNA到HCT116细胞,比较转染后0小时和36小时的RNA丰度,量化稳定性提升。
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筛选结果:131个片段显著增强m1Ψ-mRNA稳定性(调整P<0.001,对数2倍变>0.4),聚集成11个集群(A1至A11),源自不同病毒家族,如疱疹病毒科的HCMV(A1)、乙肝病毒科的HBV(A4)和皮科纳病毒科的HAV(A6)。这些元素机制上通过招募末端核苷酸转移酶TENT4(TENT4A/B)延长poly(A)尾巴,形成“混合尾巴”(主要腺苷偶掺非腺苷),有效抵抗CCR4-NOT的去腺苷化。其中,10个元素共享CNGG环状结构(如CNGGN五元环),A7则独树一帜,采用分支茎环结构。验证实验显示,所有元素在未修饰mRNA中均强劲提升荧光素酶表达,但仅A1、A2、A4、A6和A7在m1Ψ-mRNA中保留60%以上活性,证明其修饰兼容性。短版构造(如A7S,155nt)往往更高效,暗示核心功能区精简。
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特别值得一提的是A7元素,源自皮科纳病毒科的Melegrivirus A。它在多种细胞类型、递送方式和编码序列中均表现出色。通过深度诱变分析,团队揭示A7的结构特征:一个带凸起的茎(S1)连接内部环(IL),分支出两个小茎环(SL1和SL2)。关键基序包括IL中的“AGACCY”(Y为嘧啶)和SL2中的“GGGGNARUD”(R为嘌呤,D非C),这些区域对稳定性至关重要。不同于其他元素依赖CNGG环招募TENT4共因子ZCCHC14,A7可能通过独特机制实现尾巴延长。在HCT116细胞中,A7-m1Ψ-mRNA的蛋白输出比对照高出30倍以上,且持续时间长达5天以上,远超商业疫苗UTR如mRNA-1273和BNT162b2。
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体内实验进一步验证了A7的潜力。在小鼠肝脏模型中,A7线性mRNA的蛋白水平显著高于环状RNA,且表达持续超过2周,而环状RNA虽稳定但翻译效率低。A7还兼容多种碱基修饰,降低免疫原性:它抑制了干扰素产生和炎症细胞因子响应,使mRNA更安全。研究显示,A7在脂质体或LNP递送下均有效,且适用于不同编码序列,如荧光素酶或绿色荧光蛋白。这使得线性mRNA平台结合了高表达、耐用性和简单制造的优势,避免了环状RNA的环化复杂性和saRNA的dsRNA免疫风险。
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这项发现为mRNA疗法开辟新路径。传统mRNA疫苗如新冠疫苗虽快速响应,但疗效短暂;如今,融入这些稳定性增强剂的线性mRNA,可实现持久蛋白产生,适用于慢性病治疗、基因编辑或癌症免疫疗法。团队强调,这些元素源自自然病毒,结构紧凑,便于大规模生产,且无明显毒性。未来,通过优化组合或与CRISPR等技术整合,可进一步提升疗效。
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