
撰文|亦
细胞表面特征因细胞类型而异,且在疾病环境中常发生改变【1-3】。 由此产生 多种治疗策略, 并基于此 开发诊断工具。 当 下 前沿策略往往依赖 单一表面抗原,但 单抗原 几乎无法精确定义特定细胞类型【4-5】。因此,亟需开发可编程分子系统——通过整合多重细胞表面特征,将靶向输入转化为用户自定义输出。
近日,来自普林斯顿大学化学系的Tom W. Muir团队在Nature上发表了题为Programmable protein ligation on cell surfaces的文章 。 开发了名为SMART(Splicing-Modulated Actuation upon Recognition of Targets)的蛋白质执行器平台,其核心是利用条件性蛋白质反式剪接 (Conditional Protein trans-Splicing,CPS) 技术。关键突破在于采用了笼蔽式分裂内含肽 (caged split intein) 设计。该蛋白执行器平台可在特定细胞表面实现汇聚式蛋白连接,且具有系统兼容性与应用潜力 。
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首先,作者构建了基于条件性蛋白剪接的蛋白执行器SMART系统。他们使用 NrdJ-1分裂内含肽,引入 C76V突变消除非催化半胱氨酸潜在的氧化敏感性问题。通过FKBP/rapamycin/FRB三杂交系统模拟细胞共定位,作者成功筛选并优化了笼蔽结构,显著抑制了自发激活。优化后的笼蔽设计在诱导下能实现高效剪接。再使用X射线晶体学解析融合NrdJ-1结构,为后续理性设计提供了关键依据。并将优化的笼蔽分裂内含肽片段分别融合到靶向不同细胞表面抗原(如HER2, EGFR)的载体和功能蛋白片段(如SpyCatcher003的SpyN/SpyC)上,构建成SMART-SpyCatcher系统。随后,作者进行了AND逻辑门控验证。他们用K562细胞模型处理SMART-SpyCatcher,结合流式细胞术/共聚焦显微镜检测SpyTag003-AF594荧光信号,机制研究表明,阻断靶向结合、剪接或SpyTag结合中任一环节均导致信号完全丧失。
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接下来作者开始调控响应动态与复杂逻辑门。首先基于NrdJ-1晶体结构,对 eNrdJ-1Ncage 进行理性改造。分别突变静电界面残基,调整笼蔽长度。而后引入 “诱饵(decoy)”蛋白,该蛋白能与SpyC剪接形成有缺陷的SpyCatcher003,从而在特定细胞上抑制功能输出,实现了 NOT逻辑门。作者成功演示复杂逻辑运算,如 [HER2 AND EpCAM NOT EGFR],在混合细胞群中实现精准靶向。在随后的逻辑门控靶向细胞清除中,作者分别在K562HER2+/EGFR+细胞、混合K562细胞群和A431细胞上进行门控,发现对照组(错误逻辑门或无毒素)无显著清除效果,证明了逻辑门控细胞清除策略的有效性和特异性。
于是作者开始拓展靶向载体的多样性并成功将多种靶向载体融合到SMART系统。经过多种细胞模型的验证,这些新型载体均能实现预期的逻辑门控输出(如[HER2 AND CEACAM6],[HER2 AND CXCR4],[EGFR AND ADORA2A]),证明了平台的高度模块化和载体普适性。进一步地,作者将SMART系统与邻近标记技术结合,用于研究特定细胞表面微环境。如AND门控APEX2邻近标记和AND门控μMap光催化邻近标记,两种技术均实现空间分辨的蛋白质组映射,μMap凭借其超高时间分辨率和更小的标记半径,尤其适用于动态或紧密的微环境研究。最后,作者开发可释放型细胞因子SMART-IL-1β。选择具有复杂β-桶结构的 白细胞介素-1β (IL-1β) 作为功能输出蛋白,在OE19细胞上激活 [HER2 AND EpCAM] 门控,证实释放的IL-1β具有强生物活性。在 K562HER2+/EGFR+ 细胞上使用 [HER2 AND EGFR] 门控也验证了IL-1β的释放和活性,而剂量反应及笼式优化可调节SMART-IL-1β的响应强度。
总的来说, 文章首次实现细胞表面 可 编程的蛋白连接,提出笼式分裂内含 肽 驱动的布尔逻辑门控(AND/NOT/OR),突破单抗原限制,实现多重技术突破,开启了细胞表面编程研究的新范式,同时也为推动精准医学和合成生物学的发展提供了基础 。
https://doi.org/10.1038/s41586-025-09287-2
制版人: 十一
参考文献
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