前言
德曲妥珠单抗(T-DXd)作为靶向人表皮生长因子受体2(HER2)的抗体偶联药物(ADC),凭借“抗体靶向+化疗载荷”双重机制,在多种实体瘤的治疗中展现出显著疗效,尤其在乳腺癌领域,其应用带来了治疗范式的革新,显著改善了患者的生存预后1-3。然而,随着T-DXd在临床应用中的不断普及,T-DXd相关安全性问题逐渐引起了广泛的临床关注。间质性肺病(ILD)作为T-DXd常见的不良反应之一,其规范化管理也成为临床实践中待解决的重要议题之一。为了更有效地预防与管理T-DXd相关ILD,研究者们正在积极探索其发病机制,并制定相应的干预策略。
日前,浙江省肿瘤医院科研团队在Cancer Research杂志上发表了相关研究报道,通过构建免疫活性小鼠模型,结合单细胞RNA测序(scRNA-seq)、活体成像等技术,揭示了T-DXd诱导肺损伤的关键机制,并提出了潜在的临床干预方法4。这些成果有望进一步优化T-DXd的临床应用,其临床转化将为患者带来更大的治疗获益。
研究背景及目的4
在T-DXd治疗过程中,ILD作为潜在重要不良事件备受关注。其发生机制尚未完全明晰,如何优化监测策略与干预手段以实现疗效与安全性的平衡,成为当前提升患者治疗体验的关键临床方向。
本研究旨在借助scRNA-seq和活体成像技术,揭示T-DXd分子在肺组织中的细胞和分子水平动态,探索其对肺泡巨噬细胞(AM)表型分化的调控机制以及预防T-DXd诱导的ILD的临床策略,为优化ADC药物研发设计和临床干预提供科学依据。
研究方法4
研究综合运用动物模型、细胞实验及临床样本等多种方法,系统探究T-DXd相关ILD的发病机制与预防策略。
(一)动物实验
选用12-18周龄雌性BALB/c小鼠,建立免疫活性ILD小鼠模型;另选用6-8周龄雌性BALB/c小鼠,建立4T1-hHER2荷瘤小鼠模型,以验证药物分布与疗效。向实验组小鼠尾部静脉注射T-DXd(5 mg/kg/周),持续3个月,模拟临床长期用药场景。对照组予以非裂解连接子ADC(T-SMCC-DXd)及PBS,对比观察毒性差异与药物作用特征。
组织病理:采用H&E染色评估肺泡水肿、间质炎症及免疫细胞浸润(如CD8+ T细胞)
药物分布:荧光标记T-DXd(Cy3)结合活体显微镜,动态追踪药物在肺内的细胞分布
(二)细胞实验
分离小鼠原代肺泡巨噬细胞(AM)和来自健康供体的人源性AM,肿瘤细胞系(如OE19、MKN74),体外验证T-DXd摄取机制。
内吞机制:采用流式细胞术与共聚焦显微镜观察AM对T-DXd的摄取,并通过阻断FcγR受体以验证内吞路径
表型分析:scRNA-seq筛选AM的差异表达基因
(三)临床样本分析
收集98例人类肺组织样本(来自浙江省肿瘤医院组织库),包括肿瘤患者肺组织(如肺癌)和非肿瘤对照肺组织,覆盖不同性别、年龄及病理类型。
HER2表达检测:通过免疫组化分析样本中HER2蛋白表达
转录组比对:结合公共数据库(LungMAP)分析人肺细胞转录特征,支持机制的临床相关性
研究结果4
(一)机制探秘:T-DXd诱导ILD的细胞与分子基础
► T-DXd诱导的ILD是靶向非肿瘤毒性,还是脱靶效应?
确定ADC药物的副作用是由脱靶效应还是靶向非肿瘤毒性引起非常关键,因为这关系到如何制定针对性的毒性管理策略。
针对T-DXd诱导的ILD机制研究发现,尽管HER2在人类支气管上皮细胞中有表达,但在人体肺部的其他细胞类型(包括上皮细胞、内皮细胞和巨噬细胞)以及小鼠肺部中,均未检测到HER2表达。这一结果排除了T-DXd通过HER2靶点直接引发肺毒性的可能性,提示T-DXd诱导的ILD更可能是由非靶向性的脱靶毒性引起。
► T-DXd在肺部主要影响哪些细胞类型?
T-DXd主要被位于血管周壁生态位中的AM摄取(图1),而其他细胞类型(如肺泡上皮细胞和内皮细胞)并未显著摄取T-DXd。作为人体肺部最丰富的免疫细胞群,AM占肺部免疫细胞的90%以上5,其细胞表面的Fcγ受体(FcγR)是一类具有内吞功能的受体,能够识别并结合IgG抗体(如T-DXd的抗体部分)的Fc段,直接吞噬循环中的T-DXd。T-DXd诱导的ILD可能与AM的异常吞噬作用密切相关。
图1:荧光成像共定位显示,血管周壁生态位中的AM直接吞噬循环T-DXd
►T-DXd如何通过AM细胞引发ILD?
① 细胞表型转变与炎症因子释放:T-DXd被AM细胞摄取后可触发一系列细胞内信号通路的激活,导致AM细胞从免疫抑制状态转变为促炎状态。AM细胞高表达多种炎症相关基因,如分泌型磷酸蛋白1(SPP1),促进炎症因子的释放和免疫细胞的招募(图2)。通过遗传性敲低SPP1或使用抗SPP1中和抗体,可显著减少T-DXd诱导的ILD发生率,这表明SPP1在T-DXd诱导的ILD中发挥了关键作用。
② 载荷释放与旁观者杀伤效应:当T-DXd被AM细胞内吞后,与其结合的FcγR会将其递送至富含组织蛋白酶B的内体和溶酶体环境中。在这些酸性细胞器内,组织蛋白酶B会切割T-DXd的连接子,释放出细胞毒性载荷DXd,引发旁观者杀伤效应(bystander killing effect),导致肺泡炎症、免疫细胞活化和肺间质纤维化等毒性反应,最终诱发ILD。
图2:ADC药物在肺泡巨噬细胞中的非特异性内吞作用示意图
(二)预防策略:预饱和AM细胞表面FcγR,减弱非特异性内吞作用
► 如何通过预饱和策略降低T-DXd诱导ILD的风险?
通过预处理饱和AM细胞表面的FcγR,减少AM细胞对T-DXd的非特异性内吞作用。具体来说,预先给予人IgG1或曲妥珠单抗(T-DXd的亲本抗体),使之与AM细胞表面的FcγR结合并达到饱和状态,竞争性抑制T-DXd的非特异性摄取,从而降低ILD的发生率。
► 预饱和策略在动物模型中的效果如何?
① 降低药物摄取:在免疫活性的4T1-hHER2荷瘤小鼠模型中,给予人IgG1或曲妥珠单抗进行预饱和处理后,肺部对T-DXd的脱靶摄取显著降低。其中,IgG1预处理使T-DXd在肺部的脱靶摄取减少40%,曲妥珠单抗预处理则减少60%,但HER2阳性肿瘤对T-DXd的摄取不受影响,表明预饱和处理能精准减少肺部对T-DXd的非特异性摄取,同时保留药物对肿瘤的靶向作用。这一结果在对小鼠肺部切片和荧光成像分析中得到验证。
② 减轻肺部病理变化,降低ILD发生率:预饱和处理使T-DXd诱导的ILD发生率降低50%,同时减轻了肺泡壁厚度和免疫细胞浸润程度,改善了肺部炎症情况(图3)。
图3:预饱和处理组及未预处理组的H&E和CD8免疫组化染色图像
③ 安全性和耐受性良好:各治疗组小鼠均未出现体重变化,表明预饱和处理不会对小鼠的整体健康产生不良影响。同时也未影响T-DXd对4T1-hHER2肿瘤的治疗效果,不会降低药物的抗肿瘤疗效。
小 结
ADC药物的快速发展为肿瘤治疗带来了革命性突破,其独特的作用机制为多种难治性肿瘤带来了新的曙光。然而,这类药物在临床应用中也面临着诸多挑战,深入探究ADC药物相关ILD的发病机制,并开发有效的预防和管理策略,对于提升患者治疗体验和优化临床治疗方案具有至关重要的意义。
浙江省肿瘤医院科研团队的最新研究在这一领域取得重要进展,为ADC药物的安全应用和ILD的有效管理提供了新的思路和方法。研究团队聚焦于ADC代表性药物T-DXd,深入剖析其肺部脱靶效应机制,澄清了ADC类药物毒性的关键科学问题,并创新性提出通过IgG1或曲妥珠单抗预饱和FcγR的干预策略,在动物模型中证实该方案可显著降低ILD发生率,同时不影响T-DXd的抗肿瘤疗效4,为临床预防和管理ADC药物相关ILD提供了重要依据和切实可行的解决方案。
但该研究仍存在一定局限性。首先,结果主要基于小鼠模型得出,缺乏人体数据,需进一步临床验证;其二,研究主要阐明AM在ADC药物相关肺毒性中的作用,但尚不清楚其他免疫细胞(如B细胞)变化与T-DXd诱导的ILD之间的关联机制;其三,研究尚未充分了解FcγR多态性对治疗效果和不良事件的影响;且对T-DXd以外的其他ADC药物相关ILD缺乏考量,适用性受限。最后,在涉及曲妥珠单抗的联合治疗中,未充分考量心脏毒性。
我们期待未来通过持续的研究和临床实践,进一步完善ADC药物治疗方案,更好地平衡疗效与安全性,为肿瘤患者带来更优的治疗选择。
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本材料由阿斯利康提供,仅供医疗卫生专业人士参考
审批编号:CN-160618
过期日期: 2026-05-27
编辑:Michelle
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