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Immunity | 嵌合血凝素疫苗可诱导产生稳健持久的B细胞应答

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撰文 | 我的闺蜜老红帽

目前的流感疫苗所提供的保护效力较为有限,而且对具有大流行威胁的病毒几乎没有保护作用【1】。流感疫苗往往靶向血凝素HA)头部结构域的免疫显性表位,驱动免疫应答,而头部易受抗原漂移影响。在缺乏靶向头部表位免疫记忆的情况下,机体就会启动记忆性B细胞MBCs【2-6】。新一代疫苗旨在通过靶向亚显性表位,产生针对多种流感病毒亚型的、更为持久和广谱的免疫应答。然而,为实现“靶向亚显性表位”和“限制可变表位MBCs”的双重效果,疫苗配方和生产平台都需要革新和迭代。

上述思路已经在几种新型疫苗中得以体现。这些疫苗中,最可能率先应用于临床的一只疫苗其抗原是一类嵌合HA (cHA),茎结构域来自2009年H1N1大流行(pH1N1),头部结构域来自禽流感病毒亚型,而人类往往不会对禽流感病毒产生免疫响应【7,8】。临床前研究表明,cHA疫苗可以诱导靶向多种流感病毒亚型的抗体和细胞免疫响应。雪貂接种此疫苗后,可降低病毒滴度和传播维度,这也提示人类接种cHA疫苗后,感染和传播也会得到一定遏制。在一项1期临床试验中,接种含有角鲨烯佐剂(AS03)的cHA灭活流感疫苗(命名为IIV)后,机体诱导出大量靶向HA茎结构域的抗体分泌细胞。来自接种人群的血清也具有广谱亲和性,可以抑制神经氨酸酶,而且具有抗体依赖的细胞毒性,这些结果表明,该疫苗可以诱导机体启动广谱抗体响应。这一临床实验还比较了不同的配方,包括减毒活疫苗(LAIV)、IIV和IIV加AS03。与其他配方相比,连续两次接种IIV AS03后,所诱导的保护性血清抗体反应最为持久。然而,cHA疫苗接种后,所诱导的B细胞图谱,B细胞表位特异性以及对记忆性B细胞的长期影响仍不清楚。

近日,来自美国芝加哥大学的Patrick C. Wilson研究组在Immunity上发表题为Long-lasting B cell convergence to distinct broadly reactive epitopes following vaccination with chimeric influenza virus hemagglutinins的文章,就上述问题进行了深入研究,并发现cHA疫苗可以诱导产生急性浆母细胞(PB),持久启动MBC响应,并靶向HA茎结构域亚显性表位。

为了研究B细胞特异性,以及比较不同疫苗接种之后B细胞的变化情况,作者首先设计了cH8/1 (H8头部结构域,H1柄结构域)和cH5/1 (H5头,H1柄)两组疫苗,并通过LAIV和IIV AS03两种方式进行接种。随后,在不同时间点提取B细胞,进行单细胞RNA测序和B细胞受体测序。作者的接种思路是先接种cH8/1进行预刺激,浆母细胞产生单克隆抗体之后,再进行cH5/1 增强型刺激。

通过单细胞RNA测序,作者发现疫苗反应性B细胞可以分为不同的转录簇,这种转录簇的模式与B细胞激活状态、细胞分化和接受不同的疫苗配方有关。作者还分析得出,cH5/1结合B细胞发生抗体类别转换和体细胞高频突变。通过B细胞受体测序,作者发现由PBs和MBCs生成的单克隆抗体,可以有效靶向多个广谱保护性的表位,包括茎结构域的中心茎和HA锚定表位,头结构域的三聚体界面表位等。

另外,作者还确定,仅仅一个单位的cHA IIV AS03疫苗就足以启动靶向茎结构域的免疫响应,注射两个单位则可以有效提升疫苗的广谱性和持续性。接种cHA疫苗1年后,从机体中提取B细胞并进行分析显示,与目前批准的疫苗相比,茎反应性B细胞的比例增加,这表明cHA疫苗重塑了特异性B细胞库,丰富了MBC类型。这些结果也说明,复杂的流感暴露史,可以通过适当的疫苗配方重新塑造。

综上所述,作者通过单细胞RNA测序和B细胞受体库测序,确定了cHA疫苗接种后,所诱导的B细胞异质性、功能和亚群。作者发现,cHA IIV AS03灭活疫苗接种后,可以有效诱导靶向茎结构域广谱中和表位的活化B细胞和MBC,PB和MBC反应总体呈现特异性克隆重叠,也就是B细胞趋同于这些广谱保护的表位。总之,cHA疫苗诱导了靶向HA茎结构域稳健和持久的B细胞应答。

https://doi.org/10.1016/j.immuni.2025.02.025

制版人:十一

参考文献

1. Hardelid, P., Fleming, D.M., McMenamin, J., Andrews, N., Robertson, C., SebastianPillai, P., Ellis, J., Carman, W., Wreghitt, T., Watson, J.M., et al. (2011). Effectiveness of pandemic and seasonal influenza vaccine in pre-venting pandemic influenza A(H1N1)2009 infection in England and Scotland 2009-2010.Euro Surveill.16, 19763.

2. Andrews, S.F., Huang, Y., Kaur, K., Popova, L.I., Ho, I.Y., Pauli, N.T., Henry Dunand, C.J., Taylor, W.M., Lim, S., Huang, M., et al. (2015). Immune history profoundly affects broadly protective B cell responses to influenza.Sci. Transl. Med.7, 316ra192. https://doi.org/10.1126/scitranslmed. aad0522.

3. Guthmiller, J.J., Han, J., Li, L., Freyn, A.W., Liu, S.T.H., Stovicek, O.,

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4. Guthmiller, J.J., Han, J., Utset, H.A., Li, L., Lan, L.Y.L., Henry, C., Stamper, C.T., McMahon, M., O’Dell, G., Ferna ´ ndez-Quintero, M.L., et al. (2022). Broadly neutralizing antibodies target a haemagglutinin anchor epitope.Nature602, 314–320. https://doi.org/10.1038/s41586-021-04356-8.

5. Li, G.M., Chiu, C., Wrammert, J., McCausland, M., Andrews, S.F., Zheng, N.Y., Lee, J.H., Huang, M., Qu, X., Edupuganti, S., et al. (2012). Pandemic H1N1 influenza vaccine induces a recall response in humans that favors broadly cross-reactive memory B cells.Proc. Natl. Acad. Sci. USA109, 9047–9052. https://doi.org/10.1073/pnas.1118979109.

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7. Hai, R., Krammer, F., Tan, G.S., Pica, N., Eggink, D., Maamary, J., Margine, I., Albrecht, R.A., and Palese, P. (2012). Influenza viruses expressing chimeric hemagglutinins: globular head and stalk domains derived from different subtypes.J. Virol.86, 5774–5781. https://doi.org/10.1128/JVI.00137-12.

8. Krammer, F., Pica, N., Hai, R., Margine, I., and Palese, P. (2013). Chimeric hemagglutinin influenza virus vaccine constructs elicit broadly protective stalk-specific antibodies.J. Virol.87, 6542–6550. https://doi.org/10.1128/JVI.00641-13.

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