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Angew: AuNPs/DNA系统高效高选择性递送抗癌药物

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导读

福州大学吴再生教授团队和McMaster大学李应福教授团队设计编辑CDT序列,使RPs可以自我折叠成一个DNA装配体,并将RDL进一步与金纳米粒子和阿霉素结合生成复合纳米材料,可有效地被癌细胞内化,并实现荧光成像追踪。此纳米复合物具有设计简单、载药量高、选择性细胞靶向和pH响应性药物释放等优点。相关成果发表在Angew. Chem. Int. Ed.上。(DOI: 10.1002/anie.202005624)

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阿霉素( DOX ),是一种广泛使用的抗癌药物,可在 DNA序列中 插入G-C碱基对 , 通过抑制DNA的复制来诱导细胞 凋亡 。金纳米粒子(AuNPs)具有优异的光学和电子性能、良好的生物相容性和易于功能修饰等优点。有研究显示球形核酸(SNAs)(AuNPs为核心+定向合成的DNA寡核苷酸外壳)能够被细胞高效快速内吞,并且具有极好的稳定性。由于DOX与DNA的结合能力,可使用以DNA为外壳的AuNPs作为载体将DOX高效地递送到癌细胞。

许多复杂的DNA 是以大量人工合成的短链寡核苷酸为主要原料,通过程序化折叠而形成的。 然而,长DNA模板 的构建和大量短链 DNA 的人工合成耗时耗力。滚环扩增( RCA ) 是用特殊DNA聚合酶复制一个环状DNA模板 ( CDT ) ,继而产生具有重复序列的长单链DNA产物 的生物化学过程。和传统的方法相比, RCA产物 ( RPs )更容易获得, 大大简化了复杂DNA的人工合成过程 。

作者精心设计 CDT的 序列,使RPs可以自我折叠成一个DNA装配体( “DNA晶格带” (RDL))。 RPs的合成过程如Figure 1a。RPs中包含能够创建3个单元内(iuDP 1 , 2 , 3)和2个单元间(buDP1 , 2)复合体的重复序列,这些复合体通过配对相互作用使多个RPs形成一条DNA 纳米条纹 带(Figure 1b,RDL1)。在RDL1的每个自折叠单元中,有6个未配对核苷酸,包括一侧的3个5'-CGCTA-3'和另一侧的3个5'-GTATA-3'。用DNA寡核苷酸链5'-TAGCGTAGCGTAGCG-3'(SS1)和5'-TATACTATACTATAC-3' (SS2),将这些未配对单链转换成额外的双链,即RDL2的修饰带(Figure 1c )。AFM图像清楚地显示了RDL1和RDL2的带状配置(Figure 2)。RDL1和RDL2的高度约为1.1 nm,与单层DNA双螺旋结构的预测高度一致。AFM的放大图像显示出RDL2与所预测的晶格带状结构一致(Figure 3)。

▲Figure 1. DNA晶格带(RDL)合成示意图。a. 通过滚环扩增(RCA)自折叠长链DNA b.和c.分别描述了RDL1和RDL2的结构 注意:phi29 DP= phi29 DNA聚合酶(图片来源:Angew. Chem. Int. Ed.)

Figure 2. AFM图表征RDL1和RDL2 a-f.RDL1和RDL2的AFM图像,图像大小分别为5×5 (a和d)、3×3 (b和e)、1×1 (c和f)μm2 g-h. RDL1(g)和RDL2(h)分别沿着c和f指示线的横截面分析,平均宽度(AW)和平均身高(AH)分别来自于RDL1或RDL2 (n = 10)(图片来源:Angew. Chem. Int. Ed.)

Figure 3. 放大RDL2的AFM图像 将图2f所示的AFM图像放大10倍(中)和20倍(右),RDL2的观测特征与预测的网格带状结构一致(图片来源:Angew. Chem. Int. Ed.)

通过直接在AuNPs表面进行RCA反应,制备出以AuNP为核、DNA为外壳的球形纳米组装体( Au-RDL2 )(Figure 4 a)。在DNA外壳上连接细胞靶向DNA适配体(AS1411,一种专门识别在癌细胞表面过度表达的核仁素的DNA适配体),制备的Au-RDL2-AS1411组装成为Au-R2A。此纳米组装体可实现癌细胞靶向。 AFM图像显示了Au - R2A独特的结构配置 (Figure 4b),其高度为20 nm,宽度为210 nm(Figure 4 c and 4d)。37 ℃新鲜小鼠血清孵育 Au-R2A (用FAM(荧光标记物)标记SS2),孵育0-24 h,然后用琼脂糖凝胶分析,测定Au-R2A的核酸酶抗性。结果显示DNA外壳对核酸酶的消化有很强的抵抗力(Figure 5 )。

Figure 4. a. Au-RDL2-DOX和Au-R2A-DOX的制作说明 b.Au-R2A的AFM图像 c.Au-R2A的截面分析 d. Au-R2A的3D AFM图像和相应的尺寸分析(图片来源:Angew. Chem. Int. Ed.)

Figure 5. 琼脂糖凝胶电泳(1%)分析Au-R2A的血清稳定性,Au-R2A在37 ℃新鲜小鼠血清中保存不同时间(图片来源:Angew. Chem. Int. Ed.)

将Au-R2A(RDL2、Au-tT1、RDL2-AS1411和RDL2作对比)和2 mM DOX作用24 h后,离心分离负载DOX的Au-R2A(RDL2、Au-tT1、RDL2-AS1411和RDL2作对比)。Au-tT1未观察到DOX负载。DOX较多负载到RDL2、RDL2-AS1411、 Au-RDL2和Au-R2A上(试管中红色沉淀的出现,这是由于DOX负载后,DNA的溶解度降低)。上清的红色较浅,说明Au-RDL2和Au-R2A负载的DOX较多(Figure 6a )。为定量评价Au-R2A的负载能力,测Au-R2A上清的吸收光谱,得到在480 nm处的光密度(DOX的最大吸附量)(Figure 6b )。结果表明,Au-R2A显示出优异的DOX装载能力。

Figure 6a.拍摄六种不同溶液的图像,比较评价Au-R2A的药物载荷能力(含DOX(2 mM)的溶液中孵育24 h) b.上清的吸光度(将Au-R2A纳米颗粒与DOX (2 mM)孵育24 h,离心后,将上清液稀释4倍,进行UV-vis吸收测定)(图片来源:Angew. Chem. Int. Ed.)

在模拟生理条件(PBS,pH 7.4)和类似于癌细胞的酸性微环境(乙酸缓冲液,pH 5.2)下,研究 Au-R2A-DOX 的体外释放行为。如图Figure 7 所示表明,酸性环境更有利于Au-R2A释放DOX。

Figure 7. Au-R2A-DOX在不同pH值下DOX的体外释放动力学,误差条表示平均值±SD(n = 3)(图片来源:Angew. Chem. Int. Ed.)

用MCF-7细胞检测癌细胞对Au-R2A-DOX的内化能力。共聚焦显微镜分析显示,MCF-7细胞用Au-R2A-DOX处理时DOX的红色荧光比用其他方式处理(control,RDL2-DOX,RDL2-AS1411-DOX,Au-RDL2-DOX)的要高得多(Figure 8a and 8b),研究结果表明MCF-7细胞对Au-R2A的内化能力较高。

将MCF-7细胞经SS1-AS1411预处理,阻断细胞表面部分核仁素,然后用Au-R2A-DOX处理(Figure 9a)。在共聚焦显微镜下观察到未阻断细胞的红色荧光远高于预阻断细胞(Figure 9b)。流式细胞术分析显示,预阻断细胞的荧光强度要低得多(Figure 9 c)。说明AS1411与细胞表面核仁素的相互作用促进了Au-R2A穿过细胞膜。

Figure 8. Au-R2A在靶向给药和肿瘤治疗中的应用 a.MCF-7在DMEM中培养2 h的共聚焦荧光图像(control,RDL2-DOX,RDL2-AS1411-DOX,Au-RDL2-DOX,Au-R2A-DOX),阿霉素的最终浓度是40 M b.从a得到的DOX荧光强度(强度根据细胞数量归一化,误差条表示平均值±SD (n = 5),RFU:相对荧光单位 ) c.在含有不同成分的培养基中培养24 h后MCF-7的细胞存活率(阿霉素的当量浓度为134 M,误差条表示平均值±SD (n = 5))(图片来源:Angew. Chem. Int. Ed.)

Figure 9. 受体介导的Au-R2A内化 a.有或无特定膜受体阻断适配体SS1-AS1411时Au-R2A的细胞内化示意图 b.共聚焦成像证实膜受体介导Au-R2A内化到正常的MCF-7细胞中 c.流式细胞分析证实膜受体介导的Au-R2A内化进入靶细胞“+ SS1-AS1411”表示MCF-7细胞经预阻断孵化(0.6 μM SS1-AS1411,0.5 h)(图片来源:Angew. Chem. Int. Ed.)

总结作者设计证明了自折叠RCA产物可以构建致密的DNA纳米条纹带,通过直接在AuNPs表面进行RCA反应,制备出以AuNP为核、DNA为带壳的球形纳米组装体。在DNA外壳上连接细胞靶向DNA适配体,继而形成的纳米组装体可实现癌细胞靶向。 Au-R2A 具有高密度、分布均匀的DNA冠状结构,可以装载非常高水平的抗癌药物DOX,并高效内化到目标癌细胞,从而有效地诱导细胞死亡。这种DNA/AuNP系统可以作为一个普遍和强大的系统将药物输送到癌细胞。

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