北京
免疫杀伤：免疫疗法疗效的核心读出口径
免疫细胞能不能真正杀死肿瘤细胞，是癌症免疫疗法成败的根本。无论是 T 细胞、NK 细胞，还是被抗体激活的效应细胞，其"杀伤力"都需要一种可量化、可重复的实验方法来读出来。细胞杀伤检测，正是这样一个核心平台：通过共培养免疫细胞与靶细胞，测定后者被杀死、被抑制的程度，从而判断免疫疗法是否有效、机制是否成立。
爱思益普的杀伤试验服务，旨在全面评估各类免疫细胞对靶细胞的细胞毒性作用，覆盖 T 细胞、外周血单核细胞（PBMC）和自然杀伤细胞（NK）三大体系。平台的意义不仅在于"测一个数"，更在于它贯穿了免疫疗法开发的全周期：从早期候选药物的筛选，到药物作用机制的阐明，再到 CAR-T、检查点抑制剂、双特异性抗体等疗法的疗效优化，甚至到对健康细胞脱靶效应的安全性评估，都能借助杀伤检测拿到关键证据。
三大杀伤体系：各司其职
第一套体系是 T 细胞杀伤实验。这里的"T 细胞"是一个宽泛概念：既有动物来源的 T 细胞，用于跨物种免疫反应研究；也有来自患者自体或健康供体异体的人源 T 细胞，用于个性化或标准化评价；还包括 CAR-T 这类基因改造 T 细胞，以及 CD8+ 细胞毒性 T 细胞、CD4+ 辅助性 T 细胞等亚型。靶细胞一侧同样灵活，可以是癌细胞系、原代肿瘤细胞，也可以是根据研究需求定制的工程靶标。
第二套是 PBMC 介导的杀伤实验。PBMC 同时包含 T 细胞、B 细胞、NK 细胞和单核细胞，因而比单一细胞亚群更贴近真实生理——它能反映不同免疫细胞群"协同作战"清除肿瘤的综合效果。第三套是 NK 细胞杀伤检测，除了评估 NK 细胞的天然细胞毒性（依赖穿孔素、颗粒酶的释放），还能测定其介导的抗体依赖性细胞毒性（ADCC）：抗体先与靶细胞表面抗原结合，NK 细胞再通过 Fcγ 受体（如 CD16）识别抗体 Fc 段被激活，进而更高效地杀伤靶细胞。
多种读出方法：让"杀伤"看得见、测得准
杀伤的读出方法，决定了数据的精细度。流式检测可高精度量化细胞死亡、凋亡与免疫细胞活化；Incucyte 死/活细胞成像能实时、动态地监测杀伤过程；荧光法通过 ATP 量的变化反映细胞活力；细胞因子分析则通过 IFN-γ、TNF-α 的分泌评估 T 细胞的激活与功能。平台曾用 Incucyte 系统评估 METTL3 抑制剂增强 PBMC 杀伤卵巢癌 SKOV-3 细胞的能力，72 小时动态曲线清楚显示：药物单独作用影响有限，但与 PBMC 联用后对肿瘤细胞活力产生剂量依赖的毒性——把"免疫增强"这个抽象概念，落成了一组看得见、算得出的数据。值得一提的是，杀伤检测的可靠性，很大程度上取决于实验参数的标准化。效靶比（免疫细胞与靶细胞的比例）直接决定杀伤的强弱与动态范围，过高会让杀伤饱和而掩盖差异，过低则可能读不出有效信号；孵育时长则需要在"充分杀伤"与"靶细胞自然死亡"之间取得平衡。平台在 T 细胞、PBMC 与 NK 三大体系下，都对细胞来源、效靶比、孵育时间与读出终点做了规范化设计，确保同一实验在不同批次之间可比、可重复，为免疫疗法的疗效判断提供稳定可靠的量化基准。
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