在基因表达调控领域, RNA G- 四链体结构( rG4s )长期以来呈现出一个令人困惑的矛盾现象:体外高通量测序研究显示 rG4 在体外条件下广泛形成,但在活细胞内却主要处于解折叠状态;然而,细胞成像实验和内源基因表达研究却清晰展示了 rG4 的形成及其功能。这种“ 体外丰富 - 体内稀缺” 的矛盾提示, rG4 结构可能受到精密的动态调控,但这种调控的本质、分子机制及其生理病理意义尚不清楚。传统观点认为, RNA 解旋酶如 DHX36 的主要功能是解开 rG4 结构,但这一简单的 " 解旋酶 - 底物 " 模型难以解释细胞如何在需要时维持 rG4 的功能性存在。 卵子发育过程中,大量合成和储存 mRNA ,这些母源 mRNA 在卵母细胞成熟和早期胚胎发育中选择性表达、储存和降解, 为研究 rG4s 的功能提供了理想的模型。
近日,广东省第二人民医院 孙青原、欧湘红、孟铁刚、苏瑞宝 团队 在 Nucleic Acids Research 期刊上发表题为
Ultra-low-input rG4-seq reveals the RNA G-quadruplex regulome in gene expression and genome integrity的研究论文 。该研究通过开发超微量单碱基分辨率ULI-rG4-seq绘制了小鼠卵母细胞生理状态下全转录组的RNAG-四链体的分布图谱和功能图谱揭示了DHX36通过双时相调控机制维持rG4结构稳态,短暂赋予卵母细胞独特的RNA结构可塑性,这一机制不仅对卵母细胞发育至关重要,还通过调控转录延伸因子的翻译控制转录延伸和维护基因组完整性,其失调导致卵巢早衰和完全不育
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首先,研究团队开发了超低输入量 rG4 测序技术( ULI-rG4-seq ),实现了从仅 100 个卵母细胞进行全转录组 rG4 图谱绘制的技术突破。现有 rG4 检测方法面临严重的技术瓶颈: rG4-seq 虽能提供全转录组图谱但需体外离子条件处理,可能无法反映生理状态; DMS 化学探针虽可直接检测细胞内状态但易受其他结构元件干扰; G4RP-seq 使用结构特异性探针和化学交联捕获生理性 G4 ,但对低丰度转录本敏感性不足——所有这些方法均需要大量起始材料(数百万细胞),限制了在珍贵临床样本或稀有细胞群体中的应用。
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在卵子中, ULI-rG4-seq 捕获的 rG4 显著富集于关键调控区域,特别是转录起始位点( TSS )和转录终止位点( TES )附近。基因组分布分析显示 rG4 在 5'UTR ( 6.69% )和 3'UTR ( 18.88% )区域相对于其基因组大小呈现非随机分布,另外在外显子( 49.35% )和内含子( 14.74% )中也检测到丰富信号。这种策略性定位提示 rG4 可能作为结构开关,协调转录和转录后加工过程。 进一步的功能分析 揭示,含 rG4 的转录本显著富集于细胞稳态的基本生物学过程,包括 mRNA 加工、染色质修饰、细胞周期控制、翻译调控和 RNA 稳定性通路。
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为阐明 rG4 调控的基本原理,研究团队选择了 DHX36 作为研究对象——这是一个保守的 rG4 解旋酶,在 RNA 结构调控中具有潜在作用。 研究团队建立 纯合 Dhx36 敲入小鼠模型( Dhx36 ki/ki ),表达内源标签 DHX36-GFP 融合蛋白。该模型显示 DHX36 在整个发育过程中主要定位于细胞质,即使核输出抑制剂 等 处理后仍维持胞质定位,提示这是进化保守的机制。
最关键的发现:通过结合 DHX36-GFP 敲入模型与 Trim-away 技术实现急性蛋白降解,研究者揭示了 一个意外 现象—— DHX36 急性缺失( Trim-away 3 小时内降解)导致 rG4 显著积累,而慢性缺失( Dhx36 fl/ fl ;SKO 卵母细胞 )引起 rG4 水平全局降低( P < 0.0001 )。这改变了对 DHX36 的 功能 认识: DHX36 不是简单解旋酶,而是 rG4 稳态的 " 双时相守护者 " ——既是即时解旋因子,又是长期水平维持者,揭示了细胞维持 RNA 结构平衡的精密反馈机制。
细胞质 DHX 36 如何指挥核内基因表达 呢?整合 DHX36 LACE-seq 和 ULI-rG4-seq 数据,鉴定出 3,405 个共享靶标(占 DHX36 结合转录本 79% ,含 rG4 转录本 62% )。尽管 DHX36 主要定位于细胞质,其缺失却严重影响核内基因表达。全局转录分析显示 Dhx36 fl/fl ;SKO 卵母细胞转录活性显著降低( P < 0.0001 ),但 RNA 聚合酶 II ( Pol II )水平却升高,提示转录暂停。 Pol II CUT&Tag 分析证实, Dhx36 fl/fl ;SKO 卵母细胞在 TSS 处出现 Pol II 积累,在含 rG4 和 DHX36 结合的转录本中尤为明显。用 rG4 稳定剂 cPDS 处理对照卵母细胞完全重现了这一表型,建立了 rG4 结构与转录暂停的因果关系。机制研究揭示, DHX36 通过解开转录延伸正向因子( P-TEF )组分 CCNT1 和 TCEA1 转录本中的 rG4 结构,确保其高效翻译。尽管 Dhx36 fl/fl ;SKO 卵母细胞中总 Pol II 升高,延伸型 Pol II ( Ser2 磷酸化)及其激酶 CDK9 水平却降低( P < 0.0001 ),表明转录延伸受损。 显微注射 RNaseH1 mRNA 或 α - 鹅膏蕈碱抑制转录均显著降低 R-loop 和γ H2AX 信号,建立因果关系。这揭示了机制级联: DHX36 依赖的 rG4 稳态维持→延伸因子适当表达→防止转录应激和 R-loop 形成→维护基因组完整性。
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在生理水平上, DHX36 缺失的雌性小鼠卵子质量存在严重缺陷,大部分卵母细胞停滞在生发泡( GV )阶段,无法完成减数分裂成熟,丧失发育潜能。组织学分析揭示 DHX36 敲除小鼠卵泡储备加速耗竭,呈现典型卵巢早衰( POF )表型,完全不育。在哺乳动物体内建立了 RNA 结构稳态与女性生殖健康的直接因果关系。
综上所述, 本研究通过 ULI-rG4-seq 技术 在理论上 揭示了 DHX36 精密调控的 RNA G- 四链体结构动态维持新机制 , 建立了关键概念:( 1 ) RNA 结构调控的双时相特征;( 2 )跨区室调控机制;( 3 ) RNA 结构作为多层次基因表达网络的主控开关;( 4 ) RNA 结构稳态作为基因组完整性的上游保障。 同时也揭示了 rG4 在卵子发育、卵子质量控制及雌性生殖力维持中发挥重要作用。 这些进步不仅深化了对 RNA 调控的理解,也为理解卵巢早衰等生殖疾病提供了新视角,并为开发靶向 RNA 结构动态的治疗策略奠定了基础。
论文链接:https://doi.org/10.1093/nar/gkag040
制版人:十一
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