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警惕!9岁猫咪12次麻醉后突发贫血,背后原因很多医生都忽视了……

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作者:宠物医师网编委会

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丙泊酚,作为一种常见的麻醉药,因其起效快、苏醒快,被广泛用于宠物手术中。然而,一篇发表于《Frontiers in Veterinary Science》的病例报告挑战了这一传统认知

摘要

丙泊酚是猫麻醉诱导的常用药物,其导致的红细胞海因茨小体形成常被视为“无临床意义”的实验室现象。然而,本文通过深度解析一例在12次丙泊酚麻醉(总剂量62.4 mg/kg)后出现临床型海因茨小体贫血的病例,结合文献回顾,挑战了这一传统认知。病例显示,当累积剂量超过40-60 mg/kg阈值时,贫血具有显著的临床意义,但停药后逆转迅速。本文旨在为临床兽医在制定重复麻醉方案时提供关键的风险评估与决策依据。

关键词:海因茨小体,贫血,丙泊酚,猫科动物,麻醉,重复,病例报告

一、病例概况

一只9岁、6.2公斤的美国短毛家猫,因左胸侧中度恶性纤维肉瘤切除术后复发,转诊至我院接受放射治疗。就诊时,患猫精神警觉,体格检查发现胸骨旁2/6级收缩期杂音,手术瘢痕尾端有1厘米疑似肿瘤复发。

1.1初始实验室检查与评估

血常规(CBC)检查显示:红细胞压积(PCV)为38%(参考区间[RI]为24%~45%),血小板减少(血小板计数48,000/µL;RI 300,000–800,000;伴有2+凝集现象),淋巴细胞减少(淋巴细胞计数645/µL;RI 1,500–7,000)。

血涂片显示:轻度异形红细胞、大小不均、角形红细胞增多,同时伴有显著的(3+)棘形红细胞增多(见表1)。

血清生化检查提示:低磷血症(磷含量3.0 mg/dL;RI 3.8–7.5)及高乳酸血症(乳酸35.8 mg/dL;RI 5.4–15.3)。

结合患猫此前术后出血需输血的病史,当前血小板减少推测与出血消耗有关;淋巴细胞减少与应激反应相关;低磷血症可能源于采血抵抗导致的呼吸性碱中毒或吸收问题;高乳酸血症则与采血时的剧烈挣扎高度相关。心脏超声提示早期肥厚性梗阻性心肌病。

心脏超声检查显示:基底间隔局灶性增厚,鉴于正常的左心房大小,被认为是肥厚性梗阻性心肌病的早期表现。

1.2 治疗与麻醉方案调整

治疗方案确定为分20次进行的放射治疗。初始麻醉方案为术前用药美沙酮(0.2 mg/kg IV),使用阿法沙龙(1.3 mg/kg)和咪达唑仑(0.2 mg/kg IV)诱导全身麻醉。插管后通过100%纯氧吸入七氟烷维持麻醉状态。麻醉过程顺利,但苏醒后猫变得非常烦躁并且在被触摸时表现出攻击性,遂将诱导药物更换为丙泊酚(第四次治疗起)。

在第四次麻醉操作中,术前用药改为右美托咪定(2 mcg/kg IV),使用丙泊酚(Propoflo® 10 mg/ml;4.3 mg/kg IV)诱导麻醉。手术过程中对猫实施气管插管,并使用100%纯氧配合七氟烷维持麻醉。苏醒过程顺利,后续11次治疗均采用相同方案。丙泊酚剂量范围为3.2至6.4 mg/kg,在12次治疗中用于麻醉诱导的总剂量为387 mg(62.4 mg/kg)。使用七氟烷吸入麻醉维持的平均时间为32分钟。第三周结束时,由于主人反映猫出现食欲减退和放疗部位轻度炎症,我们开具泼尼松龙(0.2 mg/kg q24 h PO,并在7天内逐渐减量至q48 h)作为抗炎药物。

1.3 临床转折与诊断

治疗前3周期间,红细胞压积在36%至43%之间波动(表1)。血清生化异常包括高乳酸血症和ALT活性升高。猫在家中活动水平和食欲正常,直到第3周结束时食欲开始下降。体检显示这只猫活泼且警觉,对触摸表现出中度抵抗和发出叫声。

第四周初,临床表现恶化为显著倦怠与厌食。复查CBC显示PCV急剧降至22%,血红蛋白7.6 g/dL。血涂片显微镜检查显示约25–50%的红细胞含有海因茨小体(3+),伴有异形红细胞症(1+)、轻度缗钱状排列、轻度红细胞大小不均和棘形红细胞(2+)(图1)。强烈怀疑为重复丙泊酚给药所致的海因茨小体贫血,,因此取消了当天的麻醉,随即停用丙泊酚。


图1|100倍放大血涂片显示猫在重复丙泊酚给药后出现含海因茨小体的红细胞,箭头指示海因茨小体

停用丙泊酚后,麻醉方案改为咪达唑仑(0.2 mg/kg IV)和滴定氯胺酮(6 mg/kg IV)进行麻醉诱导。然而,苏醒情况不理想,伴严重共济失调、厌食和长期镇静状态。

后又改为右美托咪定(1 mcg/kg IV)镇静,随后进行七氟烷诱导箱诱导,然后插管并在氧气环境中维持七氟烷麻醉。饲主观察到,从第4周第3天(即最后一次丙泊酚给药后5天)开始,猫的活动量和食欲出现轻微改善,并在周末期间持续好转。

1.4 转归

在最后一次放疗后2周的复查中,红细胞压积为38%(表1),伴有轻度缗钱状排列、轻度红细胞大小不均、<0.50%网织红细胞,且未提及海因茨小体。血清生化异常包括高乳酸血症(29 mg/dL)和ALT活性升高(88 U/L)。


二、讨论

海因茨小体 是继发于血红蛋白分子球蛋白部分氧化损伤后在红细胞内形成的包涵体。氧化损伤 会 导致血红蛋白变性和沉淀,随后沉淀的分子结合到红细胞膜的内表面。海因茨小体形成可能导致受影响的红细胞过早被吞噬,进而引发溶血性贫血。

猫的红细胞( RBCs)具有较高浓度的可氧化巯基, 因此在氧化损伤时特别容易形成海因茨小体。由于葡萄糖醛酸结合能力不足, 它们防御氧化损伤的能力也较弱。 此外,猫脾脏无法有效过滤含有海因茨小体的红细胞 (5) 。

导致猫出现氧化损伤和海因茨小体形成的原因可能包括糖尿病、淋巴瘤、甲状腺功能亢进、遗传性酶紊乱、毒素、药物及矿物质缺乏。鉴于反复麻醉后出现的海因茨小体性贫血,且缺乏支持淋巴瘤、糖尿病或甲状腺功能亢进的诊断依据,我们推测这只猫的贫血是由反复使用丙泊酚所致。在猫反复使用丙泊酚诱导麻醉后,海因茨小体的形成是一个公认的病理现象1,2,6

已发表了几项研究,探讨在猫中重复使用丙泊酚诱导麻醉或诱导并持续输注(CRI)丙泊酚的影响。大多数研究指出,在猫中重复使用丙泊酚诱导麻醉可能导致轻微的海因茨小体产生,但无临床症状,因此临床意义不大。这些研究结果的差异可能与猫在整个研究期间接受的总剂量有关。



虽然无法证明因果关系,但本病例报告提示,在某些猫中,与重复丙泊酚给药相关的 海因茨小体 形成可能变得具有临床意义,并诱发伴有相关临床症状的贫血。这可能与猫接受丙泊酚的持续时间和总剂量有关,并可能解释先前研究中 海因茨小体 形成的变异性和贫血的缺乏 (1, 2, 6) 。这些研究支持这样的观点,即累积总剂量以及丙泊酚给药的持续时间可能是考虑丙泊酚给药导致海因茨小体形成的重要因素。这些研究均未进行长期随访以观察贫血或 海因茨小体 的消退。

在本病例报告中,该猫在此期间没有其他重大变化,放疗仅延迟一天后继续进行,因此我们相信血液学和临床状态的改善与停用丙泊酚直接相关。我们还报告,在最后一次丙泊酚给药后4天内临床症状有所改善,并在停用丙泊酚后1周内完全恢复。因此,由重复丙泊酚给药引起的海因茨小体贫血可能具有临床意义,并且可能需要对某些猫更改方案。治疗期间总剂量超过40 mg/kg可能是导致海因茨小体形成的一个因素。此外,停用丙泊酚可在短至4-7天内缓解海因茨小体贫血。


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1.Andress JL, Day TK, Day DG. The effects of consecutive day propofol anesthesia in feline red blood cells. Vet Surg. (1995) 24:277–82. doi: 10.1111/j.1532-950X.1995.tb01331.x

2. Bley CR, Roos M, Price J, Ruess-Melzer K, Buchholz J, Poirier V, et al. Clinical assessment of repeated propofol-associated anesthesia in cats. J Am Vet Med Assoc. (2007) 231:1347–53. doi: 10.2460/javma.231. 9.1347

3. Willard MD, Tvedten H. Small Animal Clinical Diagnosis by Laboratory Methods. St. Louis, MO: Elsevier Inc. (2012).

4. Rand JS, Kinnaird E, Baglioni A, Blackshaw J, Priest J. Acute stress hyperglycemia in cats is associated with struggling and increased concentration of lactate and norepinephrine. J Vet Intern Med. (2002) 16:123–32. doi: 10.1111/j.1939-1676.2002.tb02343.x

5. Christopher MM, White JG, Eaton JW. Erythrocyte pathology and mechanisms of Heinz body-mediated hemolysis in cats. Vet Pathol. (1990) 27:299–310. doi: 10.1177/030098589002 700501

6. Matthews NS, Brown RM, Barling KS, Lovering SL, Herrig BW. Repetitive propofol administration in dogs and cats. J Am Anim Hosp Assoc. (2004) 40:255–60. doi: 10.5326/0400255

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