专家点评Nature | 魏文胜团队发布新一代线粒体碱基编辑器助力建立疾病动物模型

点评 | 汪阳明（北京大学）

核基因组突变是多种疾病的根源，而线粒体作为细胞内具有半自主功能的细胞器，拥有独立的基因组，其基因组突变同样与多种遗传疾病密切相关。线粒体疾病通常累及多种组织器官，其中最为人熟知的包括Leigh综合征和LHON （Leber遗传性视神经病变） 。Leigh综合征的症状包括发育迟缓、肌张力减退、运动和呼吸障碍等，而LHON则表现为视力丧失、中央暗点和视神经萎缩等问题。根据MITOMAP的统计，目前已验证的线粒体致病性突变有97个，其中点突变占比高达95%。然而，由于缺乏有效的点突变相关线粒体疾病小鼠模型，线粒体疾病的研究与治疗开发受到了严重制约。

早期的小鼠模型主要通过化学诱导或遗传工程构建【1】，但这些方法操作复杂、成本高昂且对突变的精准控制较差，仅成功建立了极少数模型。近年来，研究人员成功开发了线粒体碱基编辑工具，可以对线粒体DNA实现C到T和A到G的编辑，例如DdCBEs和TALEDs。这些工具基于双链DNA脱氨酶DddA蛋白【2,3】。虽然已有研究者尝试将这些工具应用于小鼠模型的构建，但其编辑效率尚不足以模拟人类线粒体疾病中高突变负荷的特征【4,5】。此外，研究表明DdCBEs可能引发大量核基因组脱靶效应，这种非TALE依赖性的脱靶主要源于DddA蛋白的自组装以及其与CTCF的相互作用【6】。因此，基于DddA的线粒体碱基编辑工具在应用中面临核基因组脱靶的风险，难以直接建立线粒体突变与疾病表型之间的因果联系。

针对这一挑战，北京大学魏文胜课题组之前开发了mitoBEs，这是一种结合切口酶与单链DNA脱氨酶的新型线粒体碱基编辑工具，能够实现线粒体DNA的C到T和A到G编辑。与DdCBEs和TALEDs相比，mitoBEs展现出卓越的链特异性和显著降低的脱靶效应。得益于其双向碱基编辑能力，mitoBEs能够对大约87%的致病线粒体突变进行精确建模【7】。

2025年1月22日，昌平实验室及北京大学魏文胜课题组在Nature杂志在线发表了题为Precise modelling of mitochondrial diseases using optimized mitoBEs的研究论文。该研究报道了通过优化后的mitoBEs实现高效且精准地构建线粒体疾病小鼠模型的成果。利用优化版mitoBEs，研究团队成功建立了具有高突变频率的小鼠模型，这些模型表现出了与疾病相关的典型表型。此外，通过杂交实验，还获得了突变负荷达到100%以及仅含单碱基突变的精确小鼠模型。

为准确建立突变与疾病表型之间的直接联系，消除碱基编辑工具的脱靶效应尤为重要。在利用mitoBEs进行建模时，需要将RNA编码的mitoBEs注射到小鼠受精卵中。因此，该研究首先对RNA编码的mitoBEs系统的脱靶效应进行了全面评估。结果表明，RNA编码的mitoABE存在广泛的转录组脱靶效应，而mitoCBE则表现出一定程度的依赖于APOBEC1蛋白的线粒体基因组脱靶效应。为了提高mitoBEs的精准性，该研究重点优化了脱氨酶。针对mitoABE，通过突变筛选发现，TadA8e-V106W-V28F能够显著降低转录组脱靶至背景水平（图1）。针对mitoCBE，筛选了多种现有的胞嘧啶脱氨酶，并发现TadA衍生的胞嘧啶脱氨酶CBE6d在线粒体基因组上表现出的脱靶效应接近背景水平。基于这些优化成果，研究团队将改进后的mitoBEs命名为mitoBEs v2，包括mitoABE v2和mitoCBE v2（图1）。此外，该研究还系统性地评估了优化前后mitoBEs在核基因组上的脱靶效应，结果显示，无论是优化前还是优化后的mitoBEs，均未在核基因组上引发明显的脱靶效应，从而验证了其在基因编辑中的安全性和可靠性。

图1 优化mitoBEs的编辑精准性

通过将85个人类致病性线粒体DNA点突变与小鼠线粒体基因组进行同源性比对，研究确定了70个可编辑位点。进一步的细胞水平初步筛选成功实现了其中68个位点的编辑。比较发现，由环状RNA （circRNA） 编码的mitoBEs v2相比于mRNA编码的工具，具有更高的编辑效率。因此，研究团队将circRNA编码的mitoBEs v2注射至小鼠胚胎并进行移植，结果显示mitoBEs v2在多种F0代小鼠模型中均实现了较高的编辑效率，其中mt-Nd5 A12784G F0小鼠模型的突变频率高达82%。此外，该研究系统性评估了F0代小鼠在线粒体基因组和核基因组中的脱靶效应，结果表明，在整个基因组范围内未检测到脱靶效应。这一发现表明，mitoBEs v2能够构建遗传背景干净的线粒体疾病小鼠模型。更重要的是，线粒体基因组的编辑结果在小鼠不同组织中表现出广泛且持久的存在，并且能够通过母系遗传稳定传递。通过进一步杂交实验，研究成功获得了目标位点编辑效率达到100%以及仅含目标位点突变的mt-Nd5 A12784G小鼠模型。

mt-Atp6 T8591C和mt-Nd5 A12784G分别对应人类线粒体致病突变m.T9191C和m.A13379G，并分别导致Leigh综合征和LHON。研究团队对突变率较高的F0代小鼠进行了疾病表型评估，结果显示，mt-Atp6 T8591C小鼠表现出显著的心脏功能障碍，与Leigh综合征的临床特征相符；mt-Nd5 A12784G小鼠则表现出类似LHON的视力障碍。此外，研究还通过调整TALE结合位点，成功构建了仅含目标位点编辑的单碱基突变mt-Nd5 A12784G小鼠模型。这些研究结果充分证明了mitoBE v2在创建线粒体疾病小鼠模型方面的高效性和精准性，为深入探索线粒体疾病的致病机制及开发新型治疗策略提供了重要工具。

北京大学博士后伊宗裔为该论文的共同通讯作者，昌平实验室博士后张小雪为论文的第一作者，张雪、任纪武、李佳怡、魏晓旭和于莹博士也为该研究做出了重要贡献。

专家点评

汪阳明（北京大学未来技术学院分子医学研究所教授）

线粒体碱基编辑领域上空的一团乌云开始驱散

线粒体基因组定点突变的技术在大约5年前开始发展。最初人们利用TALE引导双链DNA脱氨酶来制造TALE结合位点附近的突变，这类工具一般称为DdCBE, 即double strand DNA deaminase-derived cytosine base editors。DdCBE只能实现C-to-T的编辑，但是通过与TadA8e融合，韩国基础科学研究所Jin-Soo Kim团队2022年发明了可以实现A-to-G的编辑。2023年魏文胜实验室独辟蹊径，利用TALE引导Nickase在线粒体上制造单链，同时引导单链DNA脱氨酶进行编辑，这类工具被命名为mitoBE, 意为mitochondrial DNA base editor。值得一提的是，高彩霞实验室在稍后发表了类似的工具CyDENT。mitoBE和CyDENT设计精巧，不仅将编辑限制在了线粒体DNA双链的其中一条链上，同时继承了单链DNA脱氨酶领域长久以来的研究积累，扩展了可靶向位点的多样性 （A-to-G 以及C-to-T） 以及靶向位点附近序列的兼容性。然而，这类工具要想在线粒体疾病研究和治疗方面大展身手，仍然面临着诸多问题，特别是脱靶效应和递送，脱靶效应包括转录组、细胞核及线粒体基因组上的脱靶编辑以及靶向位点附近一个约15个碱基小窗口内的bystander （旁观者） 编辑。在最新的Nature文章中，魏文胜团队利用工程化设计和筛选单链脱氨酶解决了大部分的脱靶效应，包括转录组、细胞核及线粒体基因组上的脱靶编辑，他们将这些编辑器统称为mitoBEs v2。进一步地，他们利用小鼠Neuro-2a细胞系统测试了70个人类线粒体疾病关联位点，针对2个编辑活性较高的位点，采用环形RNA编码mitoBEs V2构建了线粒体基因组特定位点高比例编辑的小鼠模型 （环形RNA的效果好于mRNA或者质粒） 。在这些小鼠模型中，除了靶向位点附近仍然有旁观者编辑以外，排除了其他区域和核基因组区域的脱靶编辑，并且一路高歌，利用不同的TALE组合，最终实现了一个单位点特异编辑的小鼠模型，证明了该位点与人类疾病中观察到的视觉减弱症状之间的因果关系。

脱靶及旁观者编辑是从线粒体碱基编辑工具问世以来，一直笼罩在这个领域上空的一团乌云，而驱散这团乌云始终是研究人员的梦想。魏文胜团队这次的研究直入云端，在mitoBE的基础上进行了大量改进，驱散了乌云的大部分区域，只剩下一个核心的云团，即旁观者编辑。我喜欢魏老师的研究，因为他们的研究带有鲜明的特点，在精巧设计以外，总是能够利用brutal force直逼问题的本质，并最终直捣黄龙，给予了领域翘首以盼的一个答案。论文结果部分的最后一段给人留下了很多遐想，彻底解决旁观者编辑的难题，作者找到解决方案了吗？在一个突飞猛进和英雄辈出的时代，我们期待着线粒体基因编辑领域的下一个突破，或许这团乌云终将完全散去？！

https://www.nature.com/articles/s41586-024-08469-8

制版人：十一

参考文献

1. Stewart, J.B., Current progress with mammalian models of mitochondrial DNA disease.Journal of Inherited Metabolic Disease, 2021. 44(2).

2. Mok, B.Y., et al., A bacterial cytidine deaminase toxin enables CRISPR-free mitochondrial base editing.Nature, 2020. 583(7817).

3. Cho, S.I., et al., Targeted A-to-G base editing in human mitochondrial DNA with programmable deaminases.Cell, 2022. 185(10).

4. Silva-Pinheiro, P., et al., A library of base editors for the precise ablation of all protein-coding genes in the mouse mitochondrial genome.Nature Biomedical Engineering, 2023. 7(5).

5. Cho, S.I., et al., Engineering TALE-linked deaminases to facilitate precision adenine base editing in mitochondrial DNA.Cell, 2024. 187(1).

6. Lei, Z.X., et al., Mitochondrial base editor induces substantial nuclear off-target mutations.Nature, 2022. 606(7915).

7. Yi, Z.Y., et al., Strand-selective base editing of human mitochondrial DNA using mitoBEs.Nature Biotechnology, 2024. 42(3).

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